Справочник врача 21

Поиск по медицинской литературе


Животные лабораторные




Физиология и диагностика беременности. Беременность как физиологический процесс. Виды беременности. Анатомно - физиологические основы размножения животных. Особенности строения наружных и внутренних половых органов разных видов беременности. Продолжительность беременности у разных видов животных. Влияние беременности на организм матери. Развитие эмбриона и плодных оболочек. Типы плацент у разных видов животных. Взаимосвязь между матерью и плодом в различные сроки беременности. Фетоплацентарный комплекс. Плацентарный барьер. Нервно-гуморальная регуляция беременности. Физиологическое и экономическое значение сухостойного периода у коров. Особенности кормления. Ухода и эксплуатации беременных животных при различных системах содержания. Значение своевременного и точного определения беременности у животных. Признаки беременности. Клинические методы определения беременности. Наружные методы исследования на беременность животных разных видов. Достоинства и недостатки наружных методов исследования. Внутренние методы диагностики беременности разных видов: ректальный, вагинальный. Топография половых органов у беременных и небеременных крупных животных. Методика ректального исследования на беременность крупных животных. Определение сроков беременности у крупных и мелких домашних животных. Лабораторные методы и применение аппаратов ультразвука, рентгена и УЗИ для диагностики беременности, их оценка. Физиология родов и послеродового периода.Понятие о родовом акте. Факторы, обуславливающие роды. Анатомо-топографические взаимоотношения плодов и родовых путей во время беременности. Положения, предлежания, позиция и членораспололожения плода до и во время родов. Синонимы родов. Родовой путь. Мягкая и твердая основа родового пути. Пельвиметрия. Особенности строения таза самок разных видов животных. Предвестники родов. Родовые силы: схватки и потуги. Участие плода в родовом процессе. Изменение параметров головы, грудного и тазового поясов плода в момент прохождения через родовой путь. Стадии родов: подготовительная, выведение плода и последовая. Влияние роженицы на течение родов. Видовые особенности родов у животных. Послеродовой период. Общие изменения в организме самок после родов. Лохиальный период. Инволюция половых органов. Видовые особенности послеродового периода. Признаки нормального течения и окончания послеродового периода. Факторы, влияющие на нормальное течение родов и послеродового периода: кормление, содержание и уход, эксплуатация (сухостойный период для коров). Взаимосвязь функции молочной железы и половых органов. Организация работы в родильных отделениях (цехах). Специфика подготовки животноводов для работы в родильных отделениях. Подготовка самок к родам. Типы родильных отделений на молочных фермах, конефермах, овцефермах, свинофермах. Гигиена нормальных родов. Ведение родов в боксах; профилактика мертворождаемости. Прием новорожденного и уход за ним. [стр. 7 ⇒]

Это период утверждения открытых Менделем законов наследственности гибридологическим методом, проведенным в разных странах на высших растениях и животных (лабораторных грызунах, курах, бабочках и др.), в результате чего выяснилось, что законы эти имеют универсальный характер. В течение немногих лет генетика оформилась как самостоятельная биологическая дисциплина. [стр. 9 ⇒]

МЕТОДЫ ЛАБОРАТОРНОЙ ДИАГНОСТИКИ Клиническая картина грибковых заболеваний кожи весьма полиморфна, поэтому во всех случаях диагноз должен быть подтвержден лабораторными методами исследования. Для лабораторной диагностики микозов используют микроскопический, люминесцентный, культуральный, иммунологический (аллергологический и серологический) методы исследования, а также эксперименты на животных. Лабораторная диагностика микозов складывается из нескольких этапов. В обычной клинической практике обычно ограничиваются микроскопическим и культуральным исследованием зараженного материала. При необходимости эти методы дополняются иммунологическими, гистологическими исследованиями, заражением экспериментальных животных. При некоторых микозах кожи важную вспомогательную роль в диагностике играет люминесцентный метод. [стр. 9 ⇒]

Однако начиная с 1974 года несколько десятков когортных исследований в различных регионах показали, что люди, употребляющие одну-две порции алкоголя в день, имеют меньше шансов перенести сердечный приступ, чем непьющие или алкоголики. Эта взаимосвязь проявлялась даже после того, как были исключены такие факторы, как пристрастие к никотину, уровень физической активности и другие условия. Наблюдения были подтверждены опытами на животных, лабораторными и метаболическими исследованиями, показавшими, что алкоголь повышает уровень полезного ЛВП-холестерина и предотвращает образование сгустков крови, что способствует профилактике сердечно-сосудистых заболеваний. Все эти факты позволяют сделать однозначный вывод о том, что умеренное употребление спиртного снижает вероятность развития подобных расстройств. Однако решение о том, пить или не пить, должно основываться на изучении всех полезных и вредных последствий употребления спиртных напитков (см. главу 8). Хочу дать вам совет: не меняйте свой привычный режим питания на основании одного исследования. Если ученые на верном пути, другие исследования подтвердят полученные ими результаты. В конечном итоге не имеет значения, внесете ли вы какие-то измене... [стр. 54 ⇒]

Афтовирусы К роду афтовирусов относится вирус ящура — возбуди тель высококонтагиозного заболевания парнокопытных домашних жи вотных, вирусная природа которого была установлена еще в 1898 і Ф. Леффлером и П. Фрошем. Вирус ящура мало чем отличается oi других пикорнавирусов. Существует 7 серотипов вируса ящура, отли чающихся друг от друга типоспецифическими антигенами. Патогенез. Вирус репродуцируется в средних слоях эпителия кожи и слизистых оболочек. Затем проникает в кровь, вызывая вирусемию При этом может произойти поражение миокарда и паренхиматозных органов. После перенесения заболевания сохраняется непродолжительный типоспецифический иммунитет (около 1-1,5 лет). Эпидемиология. Источником инфекции являются больные живої ные. Человек заражается главным образом при уходе аз ними, реже при употреблении в пищу зараженных продуктов (сырого молока и мяса) без достаточной термической обработки. Вирус ящура в течение 2 мес. сохраняется в некоторых пищевых продуктах (масле, жирах), а также в сгустках крови и костном мози погибших животных. Лабораторная диагностика. Исследуемый материал (содержи мое везикул) вводится в кожу стопы морской свинки. Через 24-48 ч в месте введения, а также в полости рта появляются везикулы. Виру* можно выделить в культуре клеток. Серодиагностику проводят в рс акции вируснейтрализации и РСК с парными сыворотками. 21.1.2. Семейство калицивирусов (Calicivi ridae) Калицивирусы ранее относили к пикорнавирусам. У этих ви русов отсутствует внешняя оболочка. Они имеют икосаэдральный кап сид. Геном представлен молекулой плюс-РНК. Калицивирусы отли чаются от пикорнавирусов своеобразной морфологической особенно стью, заключающейся в наличии 32 чашеобразных углублений ня поверхности капсида, которые располагаются в соответствии с куби ческой симметрией. Отсюда и название (лат. calix — чаша). Патогенным для человека является вирус Норфолк, который вы явлен с помощью электронной микроскопии в фекалиях детей, боль ных острым гастроэнтеритом, а также у свиней и телят. В настоящее время в состав данного семейства включен вируї гепатита Е. [стр. 499 ⇒]

Характерными признаками ботулизма у всех животных являются прогрессирующая слабость, нарушение иннервации, особенно буль-барный паралич: паралич жевательного и глотательного аппарата. Аппетит и жажда у больных сохраняются. Животные захватывают корм, долго его пережевывают, но проглотить не могут. Пытаются пить, но вода выливается из ротовой полости и через носовые ходы. Язык животного в период приступов обычно сухой и обложен желто-белым налетом. Часто из-за паралича он вываливается из ротовой полости. Животные быстро худеют. Наблюдаются расстройство зрения, слюнотечение, нарушение секреторной и моторной функций желудочнокишечного тракта. Температура тела больных животных обычно в пределах нормы. Депрессия характерна для животных всех видов от начала до конца болезни. Летальность составляет 60...95 %. У норок ботулизм (типа С) в отличие от других животных представляет достаточно серьезную проблему. Инкубационный период от 8 до 24 ч, редко до 2...3 сут. Болезнь протекает сверхостро и реже остро. Больные норки малоподвижны, они ложатся, плохо поднимаются. Наступают парез задних или передних конечностей, расслабление мускулатуры. У некоторых отмечают слюнотечение. Зрачки широко раскрыты, глазные яблоки выпячиваются из глазных орбит. Редко наблюдается диарея или рвота. Развивается коматозное состояние, и норка погибает в течение нескольких минут или нескольких часов. Иногда норки внезапно падают и погибают при явлениях клонических судорог. Летальность достигает 100 %. Патологоанатомические признаки. При ботулизме они неспецифичны. При вскрытии трупа животного обнаруживают желтушность подкожной клетчатки, множественные кровоизлияния на слизистой оболочке глотки и надгортанника, петехиальные кровоизлияния на сердце и серозных покровах. Скелетные мышцы дряблые, цвета вареного мяса. При надрезе сосудов из них вытекает густая темно-красная кровь. Желудок содержит небольшое количество кормовых масс. В желудочно-кишечном тракте находят изменения, характерные для катарального воспаления. На слизистой оболочке тонкой кишки кровоизлияния. У павших от ботулизма лошадей распухший язык выпадает из ротовой полости, гортанные хрящи изменены, множественные кровоизлияния на слизистой оболочки зева. Диагностика и дифференциальная диагностика. При постановке диагноза устанавливают связь заболевания с потреблением определенных кормов, учитывают клинические признаки и результаты лабораторных исследований. В лабораторию направляют пробы подозрительных кормов, содержимое желудка, кровь от больных и кусочки печени павших животных. Патологический материал берут не позднее чем через 2 ч после гибели животных. Лабораторную диагностику ботулизма проводят: с целью установления токсина в кормах, патологоанатомическом материале и определения типа ботулинического микроба или для выделения культуры возбудителя в патологическом материале и кормах. Токсин в присланных материалах обнаруживают на основании биологической пробы на морских свинках или белых мышах. Бактериологические исследования проводят путем посевов проб прогретого при 80 °С в течение 1 ч материала, идентификации выделенной культуры и заражения ею лабораторных животных (биопроба). Для определения типа С. botulinum ставят реакцию нейтрализации на морских свинках или белых мышах с набором специфических типовых антитоксических сывороток. При дифференциальной диагностике следует исключить сибирскую язву, бешенство, болезнь Ауески, листериоз, стахибот-риотоксикоз, псевдочуму и болезнь Марека птиц, отравления растениями и солями свинца, послеродовой парез, воспаления головного и спинного мозга, афосфероз, Вt-авитаминоз, инфекционный энцефаломиелит лошадей, ацетонемию жвачных. Иммунитет, специфическая профилактика. При ботулизме формируется типовой антитоксический иммунитет. С профилактической целью вакцинируют только норок (моновакциной или ассоциированными препаратами). Профилактика. Запрещается скармливать влажные, заплесневелые и испорченные корма, а увлажненные (комбикорм, сенная резка, отруби) следует давать сразу после приготовления. Корма животного происхождения (мясо, испорченные консервы) используют только после проварки в течение не менее 2 ч. Особое внимание обращают на выбор и подготовку корма в звероводческих... [стр. 93 ⇒]

Диагностика и дифференциальная диагностика. Предварительно болезнь диагностируют на основании эпизоотологических данных, клинической картины и патологоанатомических изменений. Наличие у павших ягнят геморрагического энтерита или некротических язв на стенке кишечника можно рассматривать как диагностический признак. Окончательный диагноз ставят на основании результатов бактериологического и серологического исследований. Материалом для лабораторного исследования служат свежий труп или перевязанный отрезок пораженного кишечника, части паренхиматозных органов, брыжеечные лимфатические узлы, трубчатая кость и стерильно взятое содержимое тонкого отдела кишечника. Материал берут не позднее чем через 3 ч после гибели животного. Лабораторный диагноз (микроскопия, культуральное и биологическое исследование) устанавливают аналогично таковому на инфекционную эн-теротоксемию. При обнаружении токсина в фильтрате содержимого кишечника или выделенной культуры определяют его тип в РН на белых мышах с типоспецифическими сыворотками к С. perfringens. При дифференциальной диагностике необходимо исключить сальмонеллез, эшерихиоз, кокцидиоз. Иммунитет и специфическая профилактика. При дизентерии, как и при других клостридиозах, формируется антитоксический иммунитет — переболевшие животные приобретают стойкую невосприимчивость к повторному заболеванию. У ягнят, полученных от вакцинированных овцематок, возникает колостральный иммунитет, сохраняющийся до 1,5 мес. Для профилактики дизентерии ягнят вакцинируют овцематок перед окотом. Для этого применяют поливалентную концентрированную гидро-окисьалюминиевую вакцину или поливалентный анатоксин против клос-тридиозов овец. Для пассивной иммунизации применяют антитоксическую сыворотку против анаэробной дизентерии ягнят и инфекционной эн-теротоксемии овец (см. Инфекционная энтеротоксемия овец). Профилактика. Суягных овцематок обеспечивают полноценным кормлением, особенно в последнюю треть беременности, когда рост плода наиболее интенсивный. Необходимо строго соблюдать правила гигиены при подготовке к проведению окота. В помещениях обеспечивают ветери-нарно-санитарный режим. Периодически проводят очистку и дезинфекцию помещений для новорожденных, родильных отделений, профилакториев и инвентаря, предназначенного для ухода за животными. Объягнившихся овец содержат отдельно небольшими группами в специальных утепленных помещениях. Проводят своевременное кормление новорожденных молозивом. Первая выпойка молодняка должна быть осуществлена не позднее 1...2 ч после рождения. Лечение. Лечение эффективно только в начале болезни. При появлении дизентерии заболевших ягнят вместе с овцематками изолируют и лечат антитоксической сывороткой против анаэробной дизентерии ягнят и инфекционной энтеротоксемии овец. Сыворотку можно применять в сочетании с антибиотиками тетрациклинового ряда. Больных содержат изолированно (подсосные ягнята с матерями) и обслуживают отдельно от здорового поголовья. Меры борьбы. В неблагополучном хозяйстве вакцинации подвергают все поголовье овец, начиная с 3-месячного возраста, согласно наставлению по применению вакцины или полианатоксина. В хозяйствах, неблагополучных по дизентерии ягнят и злокачественному отеку овец, профилактическую вакцинацию суягных маток проводят за 1,5.„2 мес до начала окота. По достижении 6-месячного возраста ягнят ревакцинируют двукратно в дозах, предусмотренных для взрослых овец. Вынужденную вакцинацию в случае появления заболевания среди непривитого поголовья овец проводят в любые сроки. В период проведения прививок кастрация и стрижка овцепоголовья запрещены. В хозяйствах (отарах), стационарно неблагополучных по анаэробной дизентерии, всем родившимся ягнятам вводят антитоксическую сыворотку. [стр. 111 ⇒]

Жители всех городов и посёлков, пьющие хлорированную воду. Всё население страны, проживающее в домах – затравочных камерах и потребляющие в пищу недоброкачественные продукты питания. Всё население страны, получающее принудительно, в обязательном порядке прививки против инфекционных заболеваний. В 60-х годах я сама была участницей чудовищного эксперимента на детях, когда учёные Москвы хотели определить, как вводить гамма-глобулин, чтобы снизить заболеваемость детскими инфекциями. Тысячам детей вводили гамма-глобулин внутримышечно, внутрикожно и подкожно. Конечно, ни о каких разрешениях от родителей не шло даже и речи. Был Приказ Минздрава, и мы его выполняли. Никто не видел в этом ничего особенного. Нас же было много врачей на этом эксперименте. Но в институтах не преподают никакой этики по проблеме «человек в эксперименте», а приказы надо выполнять. Уверена, пора в медицинских институтах, в училищах вводить такие предметы, преподавание их должно быть отражено в программах, с них должен начинаться воспитательный процесс врача: этика в медицинском эксперименте с использованием животных и человека. Будущее за молодёжью, и необходим такой предмет. Тем более, что нет никакой надежды на то, что чиновников от медицины можно как-то убедить, заставить их переменить свои взгляды на те или иные действия. Примером служит многолетняя борьба специалистов разных дисциплин за проведение в нашей стране грамотных прививок, с индивидуальным подходом, с учётом противопоказаний, чтобы вакцины не наносили вреда здоровью человека. Вакцинация важна, но она не является единственным средством в борьбе с инфекционными заболеваниями. Это – комплекс противоэпидемических мероприятий, в которых прививки – одно из звеньев. Вакцины, особенно парентерально вводимые, должны проходить те же испытания, что и лекарственные фармакологические средства. Необходимо сохранить все противопоказания к введению каждой вакцины. Противопоказания необходимо расширять, а не сокращать, поскольку дети в нашей стране ослабленные. Существующие противопоказания научно обоснованы, и это нельзя сбрасывать со счёта при нашей в целом неблагополучной экологической обстановке. Врач-педиатр должен иметь право на диагноз «поствакцинальное осложнение», а не ставить традиционное ОРЗ, когда ребёнок после прививки становится инвалидом. Проблема вакцинопрофилактики стала уже социальной, a не только чисто медицинской – это массовое мероприятие касается всей страны. Надо попытаться мысленно встать на место несчастных матерей, потерявших детей после прививки или имеющих детейинвалидов. Завтра это может коснуться каждого из нас, под вопросом стоит выживание нации. Вот некоторые обоснования такого беспокойства. В процессе эволюции за миллион лет у человека сформировалась эффективная защитная иммунная система от воздействия микробов, т. е. биологических факторов. Всем известно явление фагоцитоза, в котором принимают участие зрелые формы лейкоцитов, макрофаги, лимфоциты. Бактерии, вирусы являются живыми белковыми формированиями и легко перевариваются лейкоцитами. Последние снова способны к фагоцитозу. За миллионы лет существования человека как биологического вида у него сформировались и другие способы защиты от патогенных микроорганизмов: повышение температуры тела, изменение биосреды, выработка ферментов, ускорение лейкопоэза и др. В добавление к этому получены вакцины, которые искусственно создают специфическую невосприимчивость организма к определённому виду инфекционных заболеваний. Но только комплекс противоэпидемических мероприятий, проведённых целенаправленно, даёт положительный эффект: тщательное изучение эпидемиологии инфекционного заболевания, начинающееся, как правило, с исследования окружающей среды человека, обследование контактных лиц или животных, лабораторное обследование каждого больного – всё это позволяет не только установить причину, источник, пути передачи, входные ворота инфекции, патогенез заболевания, но и закономерности эпидемического процесса, а также 174... [стр. 174 ⇒]

Бергхоф П. К. Мелкие домашние животные. Болезни и лечение. М.: Аквариум, 1999. Ветеринарносанитарные правила содержания опытных (лабораторных) животных в вивариях НИИ, станций, лабораторий, учебных заведений, а также питомниках // Ветеринарное законодательство. 1973. Т. 2. С. 54–57. Ветеринарносанитарные правила сбора, утилизации и уничтожения биологических отходов № 1372/469: утв. Главветинспектором РФ 04.12.95. М., 1995. Глушков А. А. Инфекционные болезни лабораторных животных: лекции. М.: МВА, 1973. Западнюк И. П. и др. Лабораторные животные. Разведение, содержание и использование в эксперименте. Киев: Виша школа, 1974. Лабораторные животные // Ветеринарная лабораторная практика. М., 1963. Т. 2. С. 385–414. Лабораторные исследования в ветеринарии. Бактериальные инфекции: Справочник. М.: Агропромиздат, 1986. Лабораторные исследования в ветеринарии. Вирусные, риккетсиозные и паразитарные болезни: справочник. М.: Агропромиздат, 1987. Правила работы и охраны труда в ветеринарных лабораториях // Ветеринарное законодательство. Т. 3. С. 346–370. Правила проведения работ с использованием экспериментальных животных: Прил. к приказу Минздрава СССР № 755 от 12.08.77. Руководство по вакцинному и сывороточному делу. М.: Медицина, 1978. ÑÏÈÑÎÊ ËÈÒÅÐÀÒÓÐÛ... [стр. 123 ⇒]

Введение . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 3 1. Функционирование вивариев лабораторных животных . . . . . 7 1.1. Структура производственных площадей вивария . . . . . . . 8 2. Содержание, кормление и разведение лабораторных животных в инфекционных вивариях . . . . . . . . . . . . . . . . . . 2.1. Кормление и поение лабораторных животных . . . . . . . . 2.2. Разведение лабораторных животных . . . . . . . . . . . . . . . . 2.2.1. Белые мыши и крысы . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 2.2.2. Морские свинки . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 2.2.3. Кролики . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 3. Правила работы с лабораторными животными в ветеринарных, медицинских и биологических учреждениях . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 3.1. Прием животных в виварий (формирование поголовья) и контроль за состоянием их здоровья . . . . . 3.2. Общие правила работы с лабораторными животными . . 3.2.1. Выбор животного и методы постановки опытов . . 3.2.2. Мечение животных . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 3.3. Правила работы с опытными (зараженными) животными . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 3.4. Введение экспериментального материала в организм лабораторных животных . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 3.5. Методы взятия крови, мочи, фекалий и проб других биоматериалов . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 3.5.1. Взятие крови . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 3.5.2. Сбор мочи и кала от лабораторных животных . . . 3.6. Эутаназия лабораторных животных . . . . . . . . . . . . . . . . 3.7. Вскрытие трупов . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . [стр. 125 ⇒]

Исследования методов лечения Систематический обзор гомогенных диагно- Систематический обзор гомостических исследований 1-го уровня генных РКИ Валидизирующее когортное исследование Отдельное РКИ (с узким с качественным «золотым стандартом» доверительным интервалом) Специфичность или чувствительность столь Исследование «Всё или нивысокие, что положительный или отрицачего» тельный результат позволяет исключить/ установить диагноз Систематический обзор гомогенных диагно- Систематический обзор (гомостических исследований >2-го уровня генных) когортных исследований Разведочное когортное исследование с ка- Отдельное когортное исследочественным «золотым стандартом» вание (включая РКИ низкого качества; т.е. с <80% пациентов, прошедших контрольное наблюдение) Нет Исследование «исходов»; экологические исследования Систематический обзор гомогенных иссле- Систематический обзор дований уровня 3b и выше гомогенных исследований «случай–контроль» Исследование с непоследовательным наОтдельное исследование бором или без проведения исследования «случай–контроль» «золотого стандарта» у всех испытуемых Исследование «случай–контроль» или ис- Серия случаев (и когортные следование с некачественным или незави- исследования или исследосимым «золотым стандартом» вания «случай–контроль» низкого качества) Мнение экспертов без тщательной критиче- Мнение экспертов без тщаской оценки или основанное на физиологии, тельной критической оценки, лабораторных исследованиях на животных лабораторные исследования или разработка «первых принципов» на животных или разработка «первых принципов» Степени рекомендаций Согласующиеся между собой исследования 1-го уровня Согласующиеся между собой исследования 2-го или 3-го уровня или экстраполяция на основе исследований 1-го уровня Исследования 4-го уровня или экстраполяция на основе уровня 2 или 3 Доказательства 5-го уровня или затруднительные для обобщения или некачественные исследования любого уровня... [стр. 190 ⇒]

ТОКСОПЛАЗМА Токсоплазма (Toxoplasma gondii) — возбудитель токсоплазмоза. Геогрфическое распространение Повсеместно. Морфология В организме человека существует в виде вегетативной формы (эндозоид) и истинной цисты. Вегетативная форма (эндозоид) (рис. 11.1, а; 11.2) имеет форму полумесяца. Один конец заострен, другой закруглен. Длина 4–7 мкм. На заостренном переднем конце находится аппарат проникновения в клетку хозяина (апикальный комплекс) — коноид (для прикрепления к клетке) и роптрии, содержащие ферменты для растворения клеточной мембраны. В центре или у заднего полюса клетки расположено одно ядро. По Романовскому — Гимзе ядро окрашивается в краснофиолетовый цвет, цитоплазма — в голубой. Истинные (тканевые) цисты — сферические или овальные образования, размером 50–200 мкм. Представляют собой скопление нескольких сот эндозоидов, окруженных собственной плотной защитной оболочкой. Жизненный цикл Сложный, со сменой хозяев и чередованием полового и бесполого размножения. Промежуточные хозяева — млекопитающие, в том числе человек, многие виды птиц, могут быть рептилии. Окончательный хозяин — млекопитающие семейства кошачьих. Человек заражается токсоплазмозом в таких случаях: — при попадании ооцист в рот с грязных рук, немытых овощей и фруктов, шерсти кошек; — употребляя в пищу плохо прожаренное мясо и некипяченное молоко больных животных; — через поврежденную кожу при разделке мяса больных животных, лабораторных исследованиях крови больных; — трансплацентарно. В первом случае инвазионная стадия — зрелая ооциста, во всех остальных — эндозоиды и истинные цисты. В организме промежуточного хозяина проходит бесполое размножение паразита. Эндозоиды из кишечника проникают в лимфатическую систему, а затем в клетки внутренних органов. Локализация: головной мозг, сетчатка глаза, сердечная и скелетные мышцы, лимфатические узлы, печень, легкие и другие органы. Там эндозоиды делятся пополам либо путем внутреннего почкования, образуя 12–32 дочерние клетки (рис. 11.3; 11.4). Скопления эндозоидов внутри пораженной клетки называется псевдоцистой. Клеточная мембрана разрывается, эндозоиды выходят и проникают в соседние клетки. В этот период токсоплазма выделяется со всеми экскретами... [стр. 30 ⇒]

Для проникновения в кожу выбирают наиболее нежные участки (между пальцами, под мышками, на животе, промежности). После спаривания самки прогрызают ходы, длина хода достигает 2-3 мм за один день (самцы ходов не делают). В ходах самки откладывают яйца (20 и более в течение жизни). Здесь же осуществляется метаморфоз (яйцо —» личинка -* нимфа —> имаго), протекающий 12 недели. Продолжительность жизни имаго 40-45 дней. Деятельность клещей усиливается ночью, когда согревается поверхность тела; человек ощущает при этом зуд. При расчесах вскрываются ходы клещей. Клещи, их личинки и нимфы расселяются по телу больного. Рассеиваются по белью и окружающим предметам. Название заболевания, вызываемое у человека данным паразитом чесотка. Виды вреда, причиняемые паразитом хозяину. 1. Зуд на участках тела, пораженных клещами. 2. Расчесанные места могут загрязняться микробами, поэтому возможны воспалительные процессы. Домашние и дикие млекопитающие также страдают чесоткой, возбудителями которой служат другие виды чесоточных клещей. На человеке могут паразитировать чесоточные клещи лошадей, собак, свиней, овец, коз, верблюдов, волков и других животных. Лабораторная диагностика. Обнаружение клещей в ходах (прямые или извилистые полоски грязнобелого цвета; на одном конце хода - пузырек, в котором находится клещ). Меры личной и общественной профилактики. Личная. 2. Поддержание чистоты тела, белья, жилищ. 3. Тщательное соблюдение санитарных правил после соприкосновения с больными людьми и животными. Общественная. 1. Санитарный надзор за общежитиями, банями, санитарное просвещение. 2. Санитарно-просветительная работа. 3. Выявление и лечение больных людей. [стр. 50 ⇒]

Номер контрольной работы соответствует предпоследней и последней цифрам зачетной книжки. Все ответы на вопросы контрольной работы должны сопровождаться рисунками или схемами с соответствующими обозначениями на них. Контрольные работы должны быть написаны грамотно, аккуратно, чисто, разборчиво. В конце работы необходимо указать литературу, по которой изучался материал (автор, наименование пособия и год издания). Должна быть поставлена дата окончания работы и подпись. Проверенная контрольная работа с замечаниями преподавателя возвращаются для доработки допущенных ошибок. Студенты, получившие зачет по контрольной работе, допускаются к лабораторно-экзаменационной сессии. Самостоятельной работе по дисциплине отводиться 366 часов. Во время лабораторно-экзаменационной сессии по учебному плану предусматривается 16 часов лекционных и 26 часов лабораторнопрактических занятий Курс лекций рассчитан на рассматривание основных наиболее важных тем и разделов анатомии животных. Лабораторно-практические занятия помогут студентам ориентироваться на теле животного в расположении органов, определить по особенностям строения видовую и возрастную принадлежность органов. Студенты, проработавшие соответствующий теоретический учебный материал, выполнившие успешно контрольную работу и отработавшие 6... [стр. 6 ⇒]

Костное ребро с хрящевым соединяется синхондрозом или тугими суставами с суставными капсулами. Реберные хрящи образуют простые суставы с реберными вырезками грудины. Эти суставы имеют капсулу и грудиннореберные радиальные связки – ligg. sternocostale radiatum. Помимо этого ребра соединяются друг с другом наружными и внутренними межреберными мышцами и внутригрудной фасцией – fascia endothoracica. Реберные хрящи ложных ребер, соединяясь друг с другом, образуют реберную дугу – arcus costarum. Сегменты грудины соединяются между собой хрящевой тканью (синхондрозом), кроме того, имеется внутренняя грудная связка – ligamentum sterni proprium internum. У собаки и рогатого скота имеется вентральная грудинная связка – ligamentum sterni proprium externum. Рукоятка грудины прикрепляется к телу с помощью сустава у свиньи и жвачных животных. Лабораторное занятие №15 Соединение костей черепа Кости черепа соединяются между собой швами всех типов, синхондрозом, синдесмозом и суставами. У молодых животных швы образованы соединительной тканью (фиброзное соединение), которая с возрастом замещается хрящевой, а потом и костной тканью, возникает синостоз. Подвижными в течение всей жизни остаются нижнечелюстная и подъязычная кости. 116... [стр. 116 ⇒]

О сновны е п о н я т и я урока: раздражимость; нервная ткань; нервный узел; нервная цепочка; нервное кольцо; нервы; головной мозг; большие полушария; кора головного мозга; спинной мозг; рефлекс; инстинкт. Д ея т ел ьн ост ь у ч а щ и х ся : работа с текстом и рисунками учебника, выполнение лабораторной работы, сотрудничество с учащимися класса; заполнение таблицы. М етодические реком ендации I. Проверка знаний 1. Появление органов выделения и их строение у одноклеточных и многоклеточных беспозвоночных животных. (Ответ учащегося у доски.) 2. Строение органов выделения у позвоночных животных. (Ответ учащегося у доски.) 3. Эволюция органов выделения животных. (Фронтальный опрос.) I I . Изучение нового материала 1. Значение нервной системы. Нервная клетка как единица структурной организации нервной системы. Раздражимость. (Объяснение учителя с элементами беседы.) 2. Типы структурной организации нервной системы многоклеточных животных. (Объяснение учителя с элементами беседы, использованием рисунков 171, 172, 173, 174, 175, 176 учебника.) 3. Рефлекс, инстинкт — основа сложного поведения животных. Лабораторная работа № 12 «Изучение ответной реакции животных на раздражение». (Работа выполняется по инструктивной карточке, помещенной на с. 229 учебника.) I I I . Закрепление знаний Усложнение поведения животных — результат усложнения строения нервной системы. (Беседа.) IV. Задание на дом Изучить § 43, ответить на вопросы в конце параграфа, заполнить таблицу «Особенности строения головного мозга позвоночных животных». 93... [стр. 94 ⇒]

О сн овн ы е п он я т и я урока: метаморфоз; развитие без превращения; развитие с превращением. Д ея т ел ьн ост ь уча щ и хся : работа с текстом и рисунками учебника, выполнение лабораторной работы; заполнение таблицы. М етодические реком ендации I. Проверка знаний 1. Эволюция размножения у животных. (Выполнение тестовых заданий, взаимопроверка учащихся, их оценка результатов.) 2. Преимущества внутреннего оплодотворения у животных. (Ответ учащегося у доски.) I I . Изучение нового материала 1. Индивидуальное развитие, развитие с превращением и без превращения. (Беседа с элементами объяснения учителя.) 2. Развитие животных с превращением, или метаморфозом. (Самостоятельная работа учащихся с текстом и рисунком 184 учебника.) 3. Развитие животных без превращения. (Самостоятельная работа учащихся с текстом учебника.) 4. Особенности индивидуального развития животных. Лабораторная работа № 14 «Определение возраста животных». (Работа выполняется по инструктивной карточке, помещенной на с. 246 учебника.) I I I . Закрепление знаний Преимущества развития животных с превращением. (Заполнение таблицы «Преимущества развития животных с метаморфозом».) ПРЕИМУЩЕСТВА РАЗВИТИЯ ЖИВОТНЫХ С МЕТАМОРФОЗОМ Преим ущ ество м етам орф оза... [стр. 103 ⇒]

Правила лабораторной практики распространяются на работу фармакологических, токсикологических и других лабораторий биологического профиля и охватывают всю систему доклинических испытаний. Впервые правила GLP внедрены в 1979 г. в США, а в последующие годы во всех цивилизованных странах. Это нашло отражение в принятии в 1981 г. организацией экономического сотрудничества и развития (ОЕСД) правил надлежащей лабораторной практики (GLP) в международном масштабе. Национальные требования GLP существуют в США, Франции, Швейцарии и ряде других стран. Юридический статус требований GLP различен в США и странах Европейского сообщества. В США Администрация пищевых и лекарственных продуктов (FDA) отвечает непосредственно за проверку соблюдения правил GLP и оценку представленных результатов доклинических исследований. Во многих европейских странах проверка соблюдения правил осуществляется организациями, не отвечающими за разрешение препаратов к применению. Впервые в России нормативный документ на отечественную систему GLP утвержден приказом Министра медицинской промышленности № 154 от 17.05.91 «Руководящий нормативный документ РД 64-126-91 «Правила доклинической оценки фармакологических средств», разработанные Всероссийским научным центром по безопасности БАВ (ВНЦ БАВ, Старая Купавна). В настоящее время «Правила лабораторной практики в Российской Федерации» утверждены приказом МЗ РФ № 267 от 19.06.2003 г., которые устанавливают требования к организации, планированию и проведению доклинических исследований лекарственных средств, оформлению результатов и контролю качества. Минздрав России организует и проводит государственный контроль доклинических исследований лекарственных средств во взаимодействии с ФГУ «Научный центр экспертизы средств медицинского применения» Минздрава России, Фармакологическим комитетом Минздрава России и иными подведомственными научно-исследовательскими организациями, институтами, лабораториями, входящими в систему государственного контроля качества, эффективности и безопасности лекарственных средств. Правила GLP предъявляют определенные требования, прежде всего к подбору подопытных животных (полу, возрасту, массе), методике комплектования исследуемой и контрольной групп, а также условиям содержания животных, планировке помещений вивария и т. д. К исследованиям допускаются животные, которые по фармакокинетическим характеристикам организма близки к человеку. Доклинические исследования проводятся на здоровых животных. Надлежащая организация доклинических лабораторных испытаний должна обеспечивать объективность и сопоставимость получаемых данных исследований в опытах in vivo. Планирование и устройство вивария должно быть согласовано с органами СанЭпидНадзора (СЭН) и ветеринарно-санитарной службы по месту нахождения вивария. Структурными составляющими вивария являются: здание, оборудование, лабораторные животные, обслуживающий персонал. Здание для вивария должно проектироваться как отдельно стоящее с прилегающей к нему территорией, огороженной забором. Возможно размещение вивария совместно с лабораторией, но в данном случае его следует полностью изолировать от других помещений и разместить на верхних этажах здания. Расстояние между виварием и другими зданиями должно быть не менее 50 метров. Набор площадей помещений определяется объемом и характером работ, а также количеством и видами животных. Все помещения должны быть снабжены центральным отоплением и облицованы материалами с высокой износоустойчивостью, легко поддающимися мойке и дезинфекции (кафельная плитка, пластиковая краска), пригодными по нормам СЭН для жилых помещений, в том числе и потолки. Освещение должно быть искусственным с использованием люминесцентных ламп для исключения весенне-летнего обострения поведенческих реакций с периодичностью светового и ночного режима 12/12 часов. Каждое помещение по содержанию животных оборудуется вентиляционной системой или системой кондиционирования, а также мойкой и канализацией. Основной принцип работы в виварии: исключить занос патогенной микрофлоры в виварий и вынос таковой из вивария. Помещения для экспериментальных животных должны обеспечивать изоляцию (карантин) поступающих животных, больных животных и животных, подозреваемых в носительстве инфекций; позволять раздельное содержание различных видов животных и животных одного вида, являющихся объектом исследования различных лекарственных средств. Корма, оборудование и инвентарь для ухода за животными необходимо хранить в помещениях, изолированных от мест содержания животных. Помещения для сотрудников оборудуются мебелью, пригодной для дезинфекции. Используются индивидуальные шкафы с разделением для истой и грязной одежды. Обязательно наличие душевых-санпропускников. Оборудование: клетки, стеллажи, тележки, автоклав для стерилизации клеток и стеллажей, сухожаровой шкаф для стерилизации подстилки, овощемойки, овощерезки. Все оборудование должно выдерживать дезинфекцию или подвергаться стерилизации. Животные приобретаются в питомниках (накладная и ветеринарное свидетельство форма № 1). В России создан ряд виварных комплексов для проведения доклинических исследований в соответствии с требованиями GLP. Например, виварно-лабораторный комплекс ВНЦ БАВ (г. Старая Купавна), имеющий сертификат НИИ «Синтелабо» (Франция), питомник Института биоорганической химии им. М.М. Шемякина и Ю.А. Овчинникова... [стр. 23 ⇒]

В дальнейшем, однако, оказалось, что «классический» ретикуло-таламо-неокортикальный активирующий путь играет лишь очень ограниченную, подчиненную роль в формировании поведенческой и ЭЭГ реакции arousal и поддержании бодрствования. К настоящему времени в результате применения оптогенетических и других виртуозных методов XXI века вышеизложенная схема подвергается пересмотру. Недавно открыты две ранее неизвестные глутаматергические восходящие активирующие подсистемы в головном мозге модельных животных (лабораторных мышей и крыс): (1) прецерулеус→медиальная перегородка→гиппокамп (PC→MS→Hipp), ответствена за активация архипалеокортекса и тета-ритм в гиппокампе; (2) парабрахиальные ядра/прецерулеус→базальная область переднего мозга→неокортекс (PB/PC→BF→NC), ответственна за активацию неокортекса и десинхронизацию в ЭЭГ. Именно эти два вентральных параллельных проводящих пути формируют критически важную восходящую активирующую систему, идущую от мезопонтинной покрышки и ответственную за формирование реакции пробуждения в поведении и ЭЭГ и поддержание состояния бодрствования, с одной стороны, и активацию новой и древней коры в быстром сне – с другой. Глутаматергические нейроны прецерулеуса и парабрахиальных ядер содержат «вперемешку» как REM-on, так и REM-waking-on клетки, проецирующиеся на BF [2, 6, 8]. В то же время реакция arousal, возникающая из-за активации прочих «центров бодрствования», является, как оказалось, лишь следствием вовлечения проводящих путей, опосредующих такие процессы, как боль, страх, мотивация, поощрение/наказание, настроение, внимание, движение и т.п. [8]. Обширные, но строго ограниченные разрушения в областях PB/PC и BF вызывают глубокую экспериментальную кому у подопытных крыс, в то время как избирательные разрушения в других отделах ВРАС не приводят к столь драматичным последствиям [2, 6]. Однако возникает вопрос: вполне ли применима ли эта схема к мозгу человека, в 5 тысяч раз большего по весу мозга мыши и неизмеримо более сложного? Сочетание неврологических и нейроимиджинговым исследований, выполненных на группе больных с инсультом, показало, что и у человека исчезновение бодрствования и сознания (кома) связано с поражением ростральной области ствола, располагающейся под мозжечковым наметом и захватывающей PC/PB комплекс [4-7]. Дальнейшее тщательное изучение этой области позволило выявить в декабре 2016 года внутри нее несимметричную «кома-специфическую» зону объемом 2 мм3 в левой покрышке моста, возле медиального РВ ядра [5]. Эту зону можно образно назвать «местом локализации души». Ее функциональные связи распространяются не «вдоль» классической ВРАС, как это можно было ожидать, а направлены к скоплениям нейронов в передней части островка (AI) и прегенуальном отделе передней поясной коры (рАСС). Эти области известны, в свою очередь, как места расположения «нейронов фон Экономо» (VENs) – крупных веретенообразных клеток, дендриты которых проникают во все слои коры [3]. Клетки эти имеют мощные аксоны, но куда они проецируются – остается неизвестным. Эти клетки отсутствуют у модельных объектов, их можно обнаружить лишь у тех животных, головной мозг которых 320... [стр. 2 ⇒]

У голубых песцов отмечаются пятнистые и полосчатые кровоизлияния в подкожной клетчатке, на диафрагме, на слизистой оболочке желудка и тонкого кишечника. Печень бывает увеличена, светло- коричневого цвета, пятнистая. Диагноз ставят на основании эпизоотологических, клинических данных, патоморфологических изменений и результатов лабораторных исследований. Для исследования в лабораторию направляют труп животного целиком или наиболее пораженные отрезки тонкого отдела кишечника с содержимым, перевязанные с обоих концов, а также часть печени, селезенку и почку. Патологический материал следует брать не позже 3 - 4 ч после смерти животного. Лабораторные исследования проводят в двух направлениях: -обнаружение токсина в содержимом тонкого отдела кишечника; -выделение культуры возбудителя из патологического материала с последующей проверкой ее токсичности. Дифференциальный диагноз. Энтеротоксемия пушных зверей, в том числе и нутрий, по клиническим признакам и патологоанатомическим изменениям в кишечнике и печени имеет сходство с пастереллезом и колибактериозом. Колибактериоз и пастереллез исключают на основании эпизоотологических, клинических данных и результатов лабораторных исследований. Лечение. Лечение эффективно только в начале болезни. Можно применять с профилактической целью анатоксическую сыворотку против анаэробной дизентерии ягнят и инфекционной энтеротоксемии ягнят в количестве 50 - 200 анатоксических единиц (АЕ) подкожно или внутримышечно. Защитный эффект длится 232... [стр. 232 ⇒]

Гигиенист 3. Bсё население нашей страны страны - в длительном хроническим эксперименте ПДК - предельно допустимые концентрации Более тридцати лет я работаю в практическом здравоохранении (главным врачом СЭС и педиатром), а также в Минздравах РСФСР и СССР. Больше всего боюсь показаться нескромной, но, должна сказать, что, будучи практическим врачом, позже чиновником, я постоянно училась, читала современную медицинскую литературу по иммунологии, эпидемиологии, вирусологии и т. д. В Минздраве СССР я знакомилась с научными статьями, докладами, т. к. была секретарём экспертной комиссии. Там же, в Минздраве, я курировала работу межведомственного комитета по гигиене полимерных материалов и пластических масс, используемых в народном хозяйстве страны, в состав которого входили отечественные специалисты гигиенисты и учёные других отраслей. Кроме того, я и сама со специалистами республиканской СЭС провела научнопрактическую работу, в результате которой было доказано влияние синтетических моющих средств (CMC). Этими порошками стирали пелёнки и бельё новорождённых в роддомах. Установлено влияние их на рост заболеваемости кожными формами гнойносептических инфекций новорождённых. Исключение CMC из технологии стирки белья в 1984 году позволило снизить смертность и заболеваемость новорождённых гнойно-септическими инфекциями соответственно в 2 и в 12 раз. Все сообщаемые мною сведения документированы. Имея такой опыт учебы и работы, я не припомню, чтобы вопросы экспериментов на человеке, этическая и правовая сфера этих исследований были бы отражены в каких-либо законодательных документах. Более того, когда я пыталась в Комитете по гигиене полимерных материалов поставить вопрос перед учёными о выработке положений по заключительным испытаниям на человеке одежды, обуви и других полимерных материалов, используемых в народном хозяйства, никто даже не обратил внимания на это. Вместе с тем, у нас более 70 лет существует контингент для экспериментов, в том числе и медицинских. Дети детских учреждений и школ. Студенты, учащиеся ПТУ. Военнослужащие. Медработники и пациенты лечебных учреждений, студенты мединститутов. Жители санитарно-защитных зон около промышленных предприятий. Жители всех городов и поселков, пьющие хлорированную воду. Все население страны, проживающее в домах-затравочных камерах и потребляющее в пищу недоброкачественные продукты питания. Всё население страны, получающее принудительно, в обязательном порядке, прививки против инфекционных заболеваний. В 60-х годах я сама была участницей чудовищного эксперимента на детях, когда учёные Москвы хотели определить, как вводить гамма-глобулин, чтобы снизить заболеваемость детскими инфекциями. Тысячам детей вводили гамма-глобулин внутримышечно, внутрикожно и подкожно. Конечно, ни о каких разрешениях от родителей не шло даже и речи. Есть приказ Минздрава и мы его выполняли. Никто не видел в этом ничего особенного. Нас же было много врачей на этом эксперименте. Но в институтах не преподают никакой этики по проблеме "человек в эксперименте", а приказы надо выполнять. Уверена, пора в медицинских институтах, в училищах вводить такие предметы, преподавание их должно быть отражено в программах, с них должен начинаться воспитательный процесс врача: этика в медицинском эксперименте с использованием животных и человека. Будущее за молодежью, и необходим такой предмет. Тем более, что нет никакой надежды на то, что чиновников от медицины можно как-то убедить, заставить их переменить свои взгляды на те или иные действия. Примером служит многолетняя борьба специалистов разных дисциплин за проведение в нашей стране грамотных прививок, с индивидуальным подходом, с учетом противопоказаний, чтобы вакцины не наносили вреда здоровью человека Вакцинация важна, но она не является единственным средством в борьбе с инфекционными заболеваниями. Это - комплекс противоэпидемических мероприятий, в которых прививки одно из звеньев. Вакцины, особенно парентерально вводимые, должны проходить те же испытания, что и лекарственные фармакологические средства. Необходимо сохранить все противопоказания к введению каждой вакцины. Противопоказания необходимо расширять, а не сокращать, поскольку дети в нашей стране ослабленные. Существующие противопоказания научно обоснованы, и это нельзя сбрасывать со счета при нашей в целом неблагополучной экологической обстановке. Врач-педиатр должен иметь право на диагноз "поствакцинальное осложнение", а не ставить традиционное ОРЗ, когда ребёнок после прививки становится инвалидом. Проблема вакцинопрофилактики стала уже социальной, а не только чисто медицинской - это массовое мероприятие касается всей страны. Надо попытаться мысленно встать на место несчастных матерей, потерявших детей после прививки или имеющих детей-инвалидов. Завтра это может коснуться каждого из нас, под вопросом стоит выживание нации. Вот некоторые обоснования такого беспокойства. В процессе эволюции за миллион лет у человека сформировалась эффективная защитная иммунная система от воздействия микробов, т.е., биологических факторов. Всем известно явление фагоцитоза, в котором принимают участие зрелые формы лейкоцитов, макрофаги, лимфоциты. Бактерии, вирусы являются живыми белковыми формированиями и легко перевариваются лейкоцитами. Последние снова способны к фагоцитозу. За миллионы лет существования человека как биологического вида у него сформировались и другие способы защиты от патогенных микроорганизмов: повышение температуры тела, изменение биосреды, выработка ферментов, ускорение лейкопоэза и др. В добавление к этому, получены вакцины, которые искусственно создают специфическую невосприимчивость организма к определенному виду инфекционных заболеваний. Но только комплекс противоэпидемических мероприятий, проведённых целенаправленно, даёт положительный эффект: тщательное изучение эпидемиологии инфекционного заболевания, начинающееся, как правило, с исследования окружающей среды человека; обследование контактных лиц или животных; лабораторное обследование каждого больного - всё это позволяет не только установить причину, источник, пути передачи, входные ворота инфекции, патогенез заболевания, но и закономерности эпидемического процесса, а также выявить факторы, способствующие распространению инфекционного заболевания. В мире, благодаря эпидемиологическому надзору, комплексу противоэпидемических мер, ликвидирована оспа. Многие инфекционные заболевания стали спорадическими. Клиника других инфекционных заболеваний при эффективном лечении изменилась в сторону лёгкого течения болезни. Последнее было отмечено и в отношении дифтерии в обзорной публикации В. И. Покровского и соавт. "Современные аспекты эпидемиологии и профилактики дифтерии" (1986 г.). В итоге, к 1950-60 гг. наметилась определенная тенденция к снижению общей инфекционной заболеваемости. И тут грянула научно-техническая революция. Два-три десятилетия индустриализации и химизации народного хозяйства страны, как из ящика Пандоры, обрушили на человека и весь живой мир новые химические, физические и биологические вредные вещества, факторы. Это привело к интенсивному загрязнению окружающей среды, оскудению земель, снижению урожайности сельхозкультур и продуктивности... [стр. 36 ⇒]

Более тридцати лет я работаю в практическом здравоохранении (главным врачом СЭС и педиатром), а также в Минздравах РСФСР и СССР. Больше всего боюсь показаться нескромной, но, должна сказать, что, будучи практическим врачом, позже чиновником, я постоянно училась, читала современную медицинскую литературу по иммунологии, эпидемиологии, вирусологии и т. д. В Минздраве СССР я знакомилась с научными статьями, докладами, т. к. была секретарём экспертной комиссии. Там же, в Минздраве, я курировала работу межведомственного комитета по гигиене полимерных материалов и пластических масс, используемых в народном хозяйстве страны, в состав которого входили отечественные специалисты гигиенисты и учёные других отраслей. Кроме того, я и сама со специалистами республиканской СЭС провела научнопрактическую работу, в результате которой было доказано влияние синтетических моющих средств (CMC). Этими порошками стирали пелёнки и бельё новорождённых в роддомах. Установлено влияние их на рост заболеваемости кожными формами гнойносептических инфекций новорождённых. Исключение CMC из технологии стирки белья в 1984 году позволило снизить смертность и заболеваемость новорождённых гнойно-септическими инфекциями соответственно в 2 и в 12 раз. Все сообщаемые мною сведения документированы. Имея такой опыт учебы и работы, я не припомню, чтобы вопросы экспериментов на человеке, этическая и правовая сфера этих исследований были бы отражены в каких-либо законодательных документах. Более того, когда я пыталась в Комитете по гигиене полимерных материалов поставить вопрос перед учёными о выработке положений по заключительным испытаниям на человеке одежды, обуви и других полимерных материалов, используемых в народном хозяйства, никто даже не обратил внимания на это. Вместе с тем, у нас более 70 лет существует контингент для экспериментов, в том числе и медицинских. Дети детских учреждений и школ. Студенты, учащиеся ПТУ. Военнослужащие. Медработники и пациенты лечебных учреждений, студенты мединститутов. Жители санитарно-защитных зон около промышленных предприятий. Жители всех городов и поселков, пьющие хлорированную воду. Все население страны, проживающее в домах-затравочных камерах и потребляющее в пищу недоброкачественные продукты питания. Всё население страны, получающее принудительно, в обязательном порядке, прививки против инфекционных заболеваний. В 60-х годах я сама была участницей чудовищного эксперимента на детях, когда учёные Москвы хотели определить, как вводить гамма-глобулин, чтобы снизить заболеваемость детскими инфекциями. Тысячам детей вводили гамма-глобулин внутримышечно, внутрикожно и подкожно. Конечно, ни о каких разрешениях от родителей не шло даже и речи. Есть приказ Минздрава и мы его выполняли. Никто не видел в этом ничего особенного. Нас же было много врачей на этом эксперименте. Но в институтах не преподают никакой этики по проблеме "человек в эксперименте", а приказы надо выполнять. Уверена, пора в медицинских институтах, в училищах вводить такие предметы, преподавание их должно быть отражено в программах, с них должен начинаться воспитательный процесс врача: этика в медицинском эксперименте с использованием животных и человека. Будущее за молодежью, и необходим такой предмет. Тем более, что нет никакой надежды на то, что чиновников от медицины можно как-то убедить, заставить их переменить свои взгляды на те или иные действия. Примером служит многолетняя борьба специалистов разных дисциплин за проведение в нашей стране грамотных прививок, с индивидуальным подходом, с учетом противопоказаний, чтобы вакцины не наносили вреда здоровью человека Вакцинация важна, но она не является единственным средством в борьбе с инфекционными заболеваниями. Это - комплекс противоэпидемических мероприятий, в которых прививки одно из звеньев. Вакцины, особенно парентерально вводимые, должны проходить те же испытания, что и лекарственные фармакологические средства. Необходимо сохранить все противопоказания к введению каждой вакцины. Противопоказания необходимо расширять, а не сокращать, поскольку дети в нашей стране ослабленные. Существующие противопоказания научно обоснованы, и это нельзя сбрасывать со счета при нашей в целом неблагополучной экологической обстановке. Врач-педиатр должен иметь право на диагноз "поствакцинальное осложнение", а не ставить традиционное ОРЗ, когда ребёнок после прививки становится инвалидом. Проблема вакцинопрофилактики стала уже социальной, а не только чисто медицинской - это массовое мероприятие касается всей страны. Надо попытаться мысленно встать на место несчастных матерей, потерявших детей после прививки или имеющих детей-инвалидов. Завтра это может коснуться каждого из нас, под вопросом стоит выживание нации. Вот некоторые обоснования такого беспокойства. В процессе эволюции за миллион лет у человека сформировалась эффективная защитная иммунная система от воздействия микробов, т.е., биологических факторов. Всем известно явление фагоцитоза, в котором принимают участие зрелые формы лейкоцитов, макрофаги, лимфоциты. Бактерии, вирусы являются живыми белковыми формированиями и легко перевариваются лейкоцитами. Последние снова способны к фагоцитозу. За миллионы лет существования человека как биологического вида у него сформировались и другие способы защиты от патогенных микроорганизмов: повышение температуры тела, изменение биосреды, выработка ферментов, ускорение лейкопоэза и др. В добавление к этому, получены вакцины, которые искусственно создают специфическую невосприимчивость организма к определенному виду инфекционных заболеваний. Но только комплекс противоэпидемических мероприятий, проведённых целенаправленно, даёт положительный эффект: тщательное изучение эпидемиологии инфекционного заболевания, начинающееся, как правило, с исследования окружающей среды человека; обследование контактных лиц или животных; лабораторное обследование каждого больного - всё это позволяет не только установить причину, источник, пути передачи, входные ворота инфекции, патогенез заболевания, но и закономерности эпидемического процесса, а также выявить факторы, способствующие распространению инфекционного заболевания. В мире, благодаря эпидемиологическому надзору, комплексу противоэпидемических мер, ликвидирована оспа. Многие инфекционные заболевания стали спорадическими. Клиника других инфекционных заболеваний при эффективном лечении изменилась в сторону лёгкого течения болезни. Последнее было отмечено и в отношении дифтерии в обзорной публикации В. И. Покровского и соавт. "Современные аспекты эпидемиологии и профилактики дифтерии" (1986 г.). В итоге, к 1950-60 гг. наметилась определенная тенденция к снижению общей инфекционной заболеваемости. И тут грянула научно-техническая революция. Два-три десятилетия индустриализации и химизации народного хозяйства страны, как из ящика Пандоры, обрушили на человека и весь живой мир новые химические, физические и биологические вредные вещества, факторы. Это привело к интенсивному загрязнению окружающей среды, оскудению земель, снижению урожайности сельхозкультур и продуктивности животноводства, низкому жизненному уровню населения, росту общей и инфекционной заболеваемости, врожденным уродствам, высокой детской смертности, полному расстройству иммунной системы человека и к появлению венца научно-технического прогресса - СПИДа - синдрома приобретенного иммунодефицита. Следует только удивляться совершенству природы человека, когда он, человек, в этих экстремальных условиях ещё не занесён в Красную Книгу. [стр. 36 ⇒]

Эксперимент с использованием лабораторных животных и других живых объектов является одним из ведущих методов познания в современной медицине, фармакологии, ветеринарии, биологии. Качество лабораторных животных во многом определяет результат эксперимента. Постоянно возрастают требования к качеству лабораторных животных. Поэтому важнейшей задачей лабораторного животноводства является организация их производства и содержания, обеспечивающих необходимое качество и стандартность животных. Проведение экспериментов на живых объектах должно обеспечивать эффективное использование животных в научных целях, уменьшение их количества, соблюдение принципов гуманного обращения. Данное Руководство подготовлено специалистами в области науки о лабораторных животных, имеющих большой опыт работы как в области разведения и содержания лабораторных животных, так и в проведении экспериментальной работы, и рассчитано как руководящий рекомендательный документ по проведению контролируемых исследований и биомоделирования на живых объектах. Необходимость гармонизации отечественных норм и правил проведения доклинических исследований с международными документами требует стандартизации методических подходов и принципов, включая использование альтернативных моделей. Принципы надлежащей лабораторной практики (GLP) являются важнейшей интегральной системой для сопоставимости результатов оценки качества получаемых в разных отечественных и зарубежных учреждениях данных. Поскольку в нашей стране такое руководство для исследователей отсутствует, коллектив авторов взял на себя труд подготовить его первую версию, имеющую цель определенной унификации требований по проведению доклинических исследований. [стр. 5 ⇒]

Результативность биомедицинского эксперимента с использованием лабораторных животных в существенной степени зависит от их качества. С развитием науки требования к качеству и разнообразию лабораторных животных постоянно возрастают. Создание настоящего Руководства предопределено всем ходом развития лабораторного животноводства и экспериментального биомоделирования в нашей стране и за рубежом. В развитых зарубежных странах наука о лабораторных животных существует уже несколько десятилетий. Специалисты данной области объединены в различные ассоциации с целью обмена полученными знаниями путем их публикаций в специализированных научных изданиях, проведении научных и научно-практических конференций, симпозиумов. В настоящее время, несмотря на широкое развитие различных методов моделирования, не найдено адекватных альтернативных способов замены лабораторных животных, полностью соответствующих требованиям экспериментальной работы. Разведение лабораторных животных в России началось в первой половине прошлого столетия. Первые виварии были созданы в Институтах тропической медицины (Москва), эпидемиологии и микробиологии (Москва), экспериментальной медицины (Санкт-Петербург). В начале 1930-х гг. появились первые промышленные питомники, и, в частности, при Институте экспериментальной медицины. В то же время определенно выделяется тенденция совершенствования работы с лабораторными животными, встает вопрос о подготовке специальных кадров. Об этом свидетельствует создание курсов повышения квалификации сотрудников институтов Наркомздрава по лабораторному животноводству, на которых предусматривалось обучение специалистов для работы в питомниках и вивариях. Сохранилась программа курсов, которая была составлена в 1934 г. профессором П.П. Сахаровым и рецензировалась Институтом эпидемиологии и микробиологии Наркомздрава. Содержание программы отражало уровень развития лабораторного животноводства тех лет. Вопросы, рассматривавшиеся на курсах, существенно отличались от современных. Много внимания уделялось инфекционным заболеваниям лабораторных животных, санитарно-гигиеническим мероприятиям. Отсутствовали понятия стандартизации лабораторных животных, контролируемой и специализированной среды содержания, не было упоминания об инбредных животных. Однако сам факт существования таких курсов свидетельствует о понимании учеными того периода важности грамотной работы с лабораторными животными в лабораториях и питомниках. В послевоенные годы лабораторное животноводство в основном развивается в системе Министерства здравоохранения СССР и Академии медицинских наук СССР. В 1950-е гг. возникают довольно крупные спе... [стр. 7 ⇒]

И.И.Мечникова (Москва), Институте эпидемиологии и микробиологии им. Н.Ф.Гамалеи (Москва). Ряд небольших питомников объединяются в более крупные. Так в 1959 г. в рамках АМН СССР на базе четырех хозяйств возник питомник лабораторных животных «Центральный». Возникают научные лаборатории по селекции и экологии, охране здоровья лабораторных животных. В 1955 г. в Институте экспериментальной и клинической онкологии АМН СССР (Москва) создается лаборатория генетики и кормления лабораторных животных. Одновременно в Ленинграде в Институте экспериментальной медицины АМН СССР начинает работать группа по изучению инфекционной и инвазионной патологии лабораторных животных. С августа 1927 г. по решению Правительства СССР в Сухуми действует питомник обезьян. Впоследствии питомник был преобразован в Субтропический филиал ВИЭМ и с 1944 г. работает как самостоятельное учреждение – медико-биологическая станция в составе создававшейся в то время Академии медицинских наук СССР (МБС АМН СССР). Задачей станции было предоставление возможности ученым из различных учреждений Академии и Минздрава работать на приматах – «лабораторных двойниках» человека. С течением времени она была реорганизована в Научно-исследовательский институт Экспериментальной Патологии и терапии АМН СССР (НИИ ЭПиТ АМН СССР). В 80-х гг. в Институте было создано 2 производственных питомника и 2 лесных заказника, где животные находились на свободе. Общее количество обезьян разных видов (павианы 2-х видов, макаки 4-х видов, зеленые мартышки, гелады, мандрилы и др.) достигло 7 тыс. животных. Известные русские ученые, их сотрудники и ученики, работавшие в Институте в разные периоды времени, оказывали значительное влияние на направление исследований и задачи Института. С момента основания питомника (приматологического центра в Сухуми) Институт возглавляли видные биологи и медики, а с 1958 г. по настоящее время бессменным директором ИЭПиТ АМН СССР, а затем Учреждения Российской академии медицинских наук Научно-исследовательский Институт медицинской приматологии (НИИ МП РАМН) является академик РАМН, Международной академии астронавтики, доктор медицинских наук, профессор Лапин Борис Аркадьевич. В настоящее время Б.А. Лапин возглавляет Научно-исследовательский Институт медицинской приматологии РАМН в г. Адлер. Наряду с этим развивается и другое направление лабораторного животноводства. 12 июня 1929 г. Постановлением ЦИК и СНК СССР был... [стр. 7 ⇒]

С 1957 г. на этой базе функционировал питомник по разведению новых линий инбредных животных. В 1959 г. создан Центральный питомник лабораторных животных АМН СССР. В 1961 г. Постановлением Президиума АМН СССР № 114 от 30 августа хозяйство зкспериментально-сывороточного производства «Светлые горы», производственного отдела Института эпидемиологии и микробиологии им. Н.Ф. Гамалеи АМН СССР передается питомнику лабораторных животных «Центральный». В питомнике разместили Лабораторию экспериментальных животных Института экспериментальной и клинической онкологии АМН СССР и группу по изучению инфекционной и инвазионной патологии лабораторных животных Института экспериментальной медицины АМН СССР. В дальнейшем эти лаборатории были присоединены к Институту нормальной и патологической физиологии АМН СССР. Руководителем Лаборатории был назначен В.А. Душкин, возглавлявший ее на протяжении более 20 лет. Вновь созданная Лаборатория экспериментальных животных сосредотачивается на выполнении научной работы по изучению лабораторных животных как объектов эксперимента и по организации их разведения. В это время увеличивается количество институтов, использующих лабораторных животных, выращенных в питомниках АМН СССР. Практические задачи методического руководства питомниками и вивариями институтов требовали все более интенсивной работы Лаборатории экспериментальных животных. В 1967 г. Лаборатория экспериментальных животных получила статус самостоятельного учреждения (Постановление Президиума АМН СССР № 176 от 19.07.1967 г.) и была переименована в Научно-исследовательскую лабораторию экспериментально-биологических моделей АМН СССР (НИЛЭБМ АМН СССР). Перед Лабораторией были поставлены следующие основные задачи: генетический контроль лабораторных животных, ведение и контроль коллекционного фонда инбредных линий, получение и внедрение в эксперименты новых инбредных и мутантных линий животных и их гибридов; контроль здоровья лабораторных животных, разработка методов диагностики и средств профилактики инфекционных и инвазионных заболеваний экспериментальных животных; разработка полнорационных и экономически выгодных норм кормления, а также гигиенических норм обслуживания лабораторных животных;... [стр. 8 ⇒]

В этом и некоторых других научных центрах ведется работа по изучению инбредных животных. Так, с 1947 г. в Московском государственном университете им. М.В. Ломоносова создается отечественная линия крыс с высокой судорожной активностью – крысы Крушинского-Молодкиной. В Институте эпидемиологии и микробиологии им. Н.Ф. Гамалеи открывается лаборатория инбредных животных. В питомнике АМН СССР «Столбовая» начинается промышленное разведение инбредных мышей. Постановлением Совета Министров СССР в г. Электрогорске Московской области создается специализированный питомник лабораторных животных. Таким образом, в СССР появились специализированные учреждения, которые концентрировали исследовательскую и методическую работу по лабораторному животноводству. Уже с 1969 г. утверждается общесоюзное направление исследований «Биология и патология лабораторных животных» в рамках Научного совета АМН СССР по общей патологии. Активно разрабатываются методы генетического контроля и обеспечивается генетическая стандартность животных питомников АМН СССР. Оказывается методическая помощь по этим вопросам заинтересованным учреждениям. Питомники и институты получают необходимые племенные ядра мышей инбредных линий. В 1970-е гг. в НИЛЭБМ АМН СССР создается ферма мини-свиней, одновременно начинается работа по выведению линий кур, высокочувствительных и устойчивых к вирусам лейкоза. Разрабатывается система мониторинга здоровья лабораторных животных в питомниках, отрабатываются методы микробиологического, вирусологического, паразитологического контроля. Создаются рецептуры и промышленное производство брикетированных кормов для лабораторных животных. В НИЛЭБМ АМН СССР – одном из первых специализированных учреждений СССР, занимающимся лабораторным животноводством, – начались работы по гнотобиологии, освоены методы получения безмикробных животных для экспериментальной работы. [стр. 8 ⇒]

Успехи генетики позволяют получать новые линии лабораторных животных, полностью отвечающих требованиям конкретного исследования. Однако остаются вопросы биоэтики, которые необходимо юридически урегулировать и неукоснительно соблюдать. Во многих странах существуют как законы, так и подзаконные акты, регулирующие биомедицинские исследования, проводимые в научноисследовательских учреждениях. В США и Европе законодательная база в области лабораторного животноводства развивается с 1960-х гг. Существуют многочисленные национальные и международные организации, регламентирующие экспериментальную работу с использованием лабораторных животных и развивающих альтернативные методы биомоделирования. В Российской Федерации в настоящее время нет закона, определяющего порядок проведения экспериментальной работы в учебных и научных целях с использованием лабораторных животных. Попытки принять Федеральный закон о защите животных от жестокого обращения не увенчались успехом. Закон был внесен на рассмотрение в Государственную Думу в июне 1998 г., прошел три чтения, получил огромное количество замечаний и поправок, а в итоге был отклонен Президентом РФ. После этого в феврале 2000 г. была создана согласительная комиссия, которая до настоящего времени не пришла к окончательному решению по данному законодательному акту. В рамках Российской академии медицинских наук и Министерства здравоохранения РФ в апреле 2003 г. было разработано и принято Положение о контроле качества лабораторных животных, питомников и экспериментально-биологических клиник (вивариев). В соответствии с этим Положением были определены правила использования лабораторных животных контролируемого качества для биомедицинских исследований с целью проведения доклинических исследований лекарственных средств и получения научно обоснованных оценок безопасности лекарственных средств, пищевых продуктов, косметических средств. В соответствии с этим Положением был определен порядок добровольной сертификации лабораторных животных для использования их в экспериментах. Сертификат выдает Научный центр биомедицинских технологий РАМН на основе анализа результатов регулярных обследований животных контрольно-диагностическими лабораториями питомников, ЭБК (вивариев), выборочных исследований, осуществляемых непосредственно в Центре. Для реализации данного Положения коллективом сотрудников Центра было разработано и опубликовано Руководство по содержанию и разведению лабораторных животных в питомниках и экс... [стр. 10 ⇒]

Вопросы, касающиеся проведения ветеринарного надзора, регламентируются в ФЗ РФ «О ветеринарии» № 4979-1 от 14.05.1993 г. Существуют правила безопасности, производственной санитарии, охранно-карантинного и ветеринарно-санитарного режимов на предприятиях биологической промышленности, утвержденные руководителем департамента ветеринарии Минсельхозпрода России, Главным Государственным ветеринарным инспектором 7 июня 1999 г. Приказом Минздрава РФ № 267 от 19.06.2003 года «Об утверждении правил лабораторной практики» даны определение и методология применения Стандартных операционных процедур (СОП). В то же время российские GLP не гармонизированы с соответствующими международными принципами, разработанными Организацией экономического сотрудничества и развития (ОЭСР или OECD), т.е. существующие на данный момент российские СОПы должны быть приведены в соответвсвие с международными стандартами. С марта 2010 г. в силу вступил национальный стандарт РФ ГОСТ Р 53434-2009 «Принципы надлежащей лабораторной практики», полностью аутентичный принципам GLP/OECD. Следует отметить, что в результате многолетнего опыта работы НЦБМТ РАМН и ряда учреждений РАН уже наработаны основные пакеты СОПов и существует база для подготовки новых. Тем не менее, СОПы и иные нормативные документы, используемые в Российской Федерации, должны соответствовать стандартам, предлагаемым OECD, Международным инженерным консорциумом (IEC), Международной организацией по стандартизации (ISO), Комитетом по контролю качества пищевых продуктов и лекарственных средств США (FDA), для того, чтобы результаты этих исследований адекватно воспринимались международными организациями. В соответствии с вышеизложенными позициями данное Руководство направлено на обеспечение: проведения контролируемых исследований на лабораторных животных и альтернативных моделях; получения достоверных и воспроизводимых экспериментальных данных в опытах с использованием лабораторных животных; нормального физиологического развития лабораторных животных и состояния их здоровья; стандартности лабораторных животных по генетическим параметрам и условиям содержания; стандартных условий содержания лабораторных животных при их воспроизводстве в питомниках и проведении экспериментов в эк... [стр. 11 ⇒]

Прохождение полного курса университетского образования с получением степени бакалавра или магистра (в зависимости от принятых национальных норм) или получение соответствующего образования по одной из биомедицинских дисциплин, таких как биология животных, медицина или ветеринария. 2. Прохождение основного курса по науке о лабораторных животных (не менее 80 часов) целиком или по частям, либо получение равноценного образования другим путем. Базовое образование направлено на создание основы ответственного отношения к использованию животных и достижение высоких научных стандартов. Оно должно быть завершено до того, как ученый будет считаться компетентным для выполнения исследований на животных под свою ответственность. Дополнительные специальные знания по хирургии, отдельным методам и различным видам животных должны быть получены в тесном сотрудничестве с опытными исследователями и техниками по уходу за лабораторными животными или при посещении специализированных курсов. Лица, намеренные совершенствоваться в навыках и компетентном использовании с целью стать специалистами в области науки о лабораторных животных – категория D, являются объектом дальнейших рекомендаций. Лица, имеющие категорию D, очевидно, должны пройти дополнительное специальное обучение, о котором упоминалось выше. Лицо, претендующее на получение категории С, должно обладать знаниями и практическим опытом в соответствии с темами, перечисленными в разделе «Уход и разведение животных» рекомендаций для 1-го уровня категории А: 1. Чистка, кормление и поение экспериментальных, разводимых и других животных. 2. Компетентность в обращении с традиционными видами лабораторных животных. 3. Ежедневное наблюдение и осмотр животных в соответствии с общими условиями содержания (включая отметку о принятии пищи/воды). 4. Выполнение некоторых методов эвтаназии в соответствии с детально разработанными процедурами. 5. Общее содержание помещений для животных. 6. Регистрация показателей среды в помещениях для животных и процедур, проводимых в этих помещениях. Краткое изложение рекомендаций для категории С Минимальное требование к персоналу категории С – образование по биомедицинской дисциплине на уровне бакалавра или магистра,... [стр. 32 ⇒]

FELASA определяет категорию D как руководство лабораторией и специализацию более высокого уровня, как лица, чья квалификация и опыт позволяют выполнять по крайней мере следующие обязанности: 1) управлять всеми животными, человеческими и физическими ресурсами учреждения, где содержатся лабораторные животные; 2) создавать условия для здоровья и благосостояния животных; 3) оказывать в случае необходимости помощь и содействие исследователям, работающим с лабораторными животными, а также обеспечивать практическую поддержку научно-исследовательских программ; 4) обеспечивать соответствие деятельности всем законам, правилам и директивам, касающимся разведения, содержания и использования лабораторных животных, а также управления виварием; 5) нести ответственность за разработку и представление образовательных программ для внутреннего и внешнего пользования по гуманному содержанию и использованию лабораторных животных, продолжающих развитие концепции 3R [Russel & Burch, 1959]; 6) содействовать дальнейшему развитию нововведенных концепций гуманного содержания и использования лабораторных животных, включая проводимые исследования в области науки о лабораторных животных. Уровень обучения Образование и обучение специалистов в области науки о лабораторных животных должно предлагаться в виде последипломного обучения. Специфические требования Основным требованием для получения дальнейшего образования в области науки о лабораторных животных должно быть наличие степени по биомедицинским или ветеринарным наукам или другой сертифицированной эквивалентной квалификации. Предполагается, что кандидат еще до начала курса обучения будет иметь соответствующий опыт в области науки о лабораторных животных. Свидетельство об успешном окончании курса может быть получено только после сдачи экзамена или подтверждения квалификации в другом виде. Заключительная оценка или экзамен будут свидетельствовать о способности кандидата проводить научно-исследовательскую работу. Примером такой оценки может быть: 1) публикация научной статьи в качестве главного автора на основе именно оригинального научного исследования (не истории болезни) в одном из рецензируемых журналов;... [стр. 34 ⇒]

Основные правила содержания лабораторных животных Лабораторным животным в питомнике и ЭБК должны быть обеспечены: – полноценное кормление и уход; – поддержание нормального состояния здоровья; – содержание в соответствующих для каждого вида нормативных условиях; – возможность удовлетворения физиологических и поведенческих потребностей; – ежедневный контроль условий содержания; – быстрое устранение недостатков и факторов, могущих повлечь за собой стресс и страдания животных. В каждом помещении питомника и ЭБК рекомендуется содержать животных только одного вида и участвующих в одном исследовании, за исключением отдельных случаев, предусмотренных условиями эксперимента, на каждой клетке (боксе, вольере) должна быть этикетка с указанием данных о животном и другой специальной информацией. Обслуживание одним работником животных разного вида в питомнике не допускается. В случае обслуживания одним рабочим небольших групп животных разных видов в ЭБК следует соблюдать следующую по... [стр. 62 ⇒]

4 Способ IV – Метод Камилы. Накинуть сверху на крысу тканую салфетку. Зафиксировать животное, охватывая рукой грудную клетку поверх салфетки. Метод позволяет зафиксировать агрессивных и возбужденных животных. 3.5 Способ V – Фиксация в специальном устройстве для выполнения технических манипуляций. Способ используется для внутривенной инъекции в хвостовую латеральную вену и для взятия крови из хвостовой вены. Подготовить специальный бокс для фиксации крыс. Достать животное из клетки, поместить его на ровную поверхность перед открытым боксом, мягко направить крысу в бокс, придерживая ее за хвост. Закрыть бокс (Рис. 5). 3.6 Взятие детенышей. Перенос детенышей крыс осуществляется осторожно за кожу холки или за все туловище. Новорожденных переносят по несколько особей в ладонях, можно с небольшим количеством подстила (Рис. 6). Третий раздел программы может быть посвящен СОП по работе Комиссии по гуманному содержанию и использованию лабораторных животных: Комиссия по контролю за содержанием и использованием лабораторных животных. Заполнение протокола-заявки в биоэтическую комиссию. Рассмотрение протоколов-заявок на лабораторных животных. Проверка и оценка программы по уходу и работе с лабораторными животными. СОП данного раздела описывают: кем организована Комиссия по гуманному обращению с животными, ее состав и обязанности; как осуществляется обучение новых членов Комиссии; как часто проводятся совещания Комиссии и какие вопросы на них обсуждаются; как оценивается соответствие требованиям Политики по работе с лабораторными животными; как оформляется протокол-заявка на работу с животными, и как она рассматривается Комиссией; как инспектируются работы по утвержденным протоколам-заявкам. [стр. 103 ⇒]

3. Особенности практики Практика имеет целью закрепление и углубление теоретических знаний, применение их при решении производственных задач и является базовой для формирования умений и навыков, необходимых для осуществления профессиональной деятельности выпускника. Оценка знаний, умений и навыков студентов проводится с помощью различных приемов, которые определяются программой практики. В завершении практики руководителями производится проверка правильности заполнения рабочих тетрадей и дневника практики, защита отчета. Итоговый контроль проводится в виде защиты отчетов с аттестацией практических навыков. 2. Цели и задачи практики Научить студентов основным видам болезнетворных бактерий, грибов и вирусов, их классификации, особенности жизнедеятельности и методам диагностики; методам микроскопии, выделения и идентификации. Приобретаемые умения и навыки на основе полученных знаний для формирования частных компетентностей и свойств личности: Умения:  проводить бактерио- и вирусоскопию;  отбирать материал для микробиологических и вирусологических исследований;  правильно пользоваться медико-технической и ветеринарной аппаратурой, инструментарием и оборудованием в лабораторных, диагностических и лечебных целях;  делать посевы микроорганизмов и вирусов на питательные среды для получения чистых культур, идентифицировать выделенную культуру;  проводить заражение и вскрытие лабораторных животных и определять факторы патогенности и вирулентность микроорганизмов и вирусов;  проводить отбор патматериала от павших животных, проб кормов, воды, воздуха, навоза, почвы для лабораторных исследований;  выделять и идентифицировать возбудителей инфекционных болезней различной этиологии;  использовать основные реакции иммунитета для идентификации возбудителей и обнаруживать с помощью различных серологических реакций антитела в сыворотке крови больных животных при инфекционных болезнях;  ставить и учитывать серологические реакции. Навыки:  навыками работы на лабораторном оборудовании;  методами наблюдения и эксперимента;  методами бактериологического, микологического, микотоксикологического и вирусологического анализа;  классическими и геннотипическими методами лабораторной диагностики инфекционных болезней животных;  современными методами обнаружения и изоляции микроорганизмов и вирусов из патологического материала;  методами идентификации бактерий, микроскопичесих грибов и вирусов, получения различных компонентов серологических реакций (диагностических сывороток, антигенов, эритроцитов и др.);  постановки биопробы на разных видах лабораторных животных, вскрытия трупов лабораторных животных и патоморфологической диагностикой заболеваний;  клинического обследования животных на инфекционные болезни с целью прижизненного отбора патматериала и отправки его в лабораторию;  интерпретации результатов лабораторной диагностики с целью постановки своевременного диагноза на инфекционные болезни животных;  составления планов лабораторных исследований при заразной патологии и оформления соответствующей необходимой документации. [стр. 5 ⇒]

В ходе самостоятельной работы студентов необходимо 1. Приготовить препараты-отпечатки из патологического материала и окрасить их различными методами. 2. Микроскопировать демонстрационные и самостоятельно приготовленные препараты и по возможности сделать зарисовки микроскопической картины увиденного. 3. Поставить предположительный диагноз, основываясь на полученных данных микроскопии мазков, результаты исследований внести в бланк экспертизы. 4. Провести посевы подготовленного материала на различные питательные среды и поместить их в термостат. Вопросы домашнего задания 1. Как осуществляется лабораторная диагностика бактериальных инфекций. 2. Выберите одно из инфекционных заболеваний бактериальной этиологии и опишите подробно методику её лабораторной диагностики, опираясь на полученные знания. Результат необходимо включить в отчет. 8 УЧЕБНЫЙ ЭЛЕМЕНТ. КОРМЛЕНИЕ И УХОД ЗА ЛАБОРАТОРНЫМИ ЖИВОТНЫМИ. БИОПРОБА. АЛЛЕРГИЧЕСКИЕ ПРОБЫ. Цель занятия: обучить студентов правилам ухода и кормления за лабораторными животными. Технике проведения биопробы и аллергического диагностического исследования различных видов лабораторных животных. Освоить различные методы заражения и методику вскрытия трупов лабораторных животных, овладеть методикой бактериологического исследования трупа, отработать технику взятия материала для вирусологического исследования, научиться получать различные компоненты крови и правила оформления документации. Определить вирулентность микроорганизмов. Оборудование и материалы: лабораторные животные (кролики, белые мыши, морские свинки), стерильные шприцы и инструменты для заражения животных и взятия крови, иглы в стерилизаторах, стерильные тампоны; 70°-й этиловый спирт; краски для мечения животных, стерильный физиологический раствор, доски для фиксации трупов в кюветах, комплект инструментов для вскрытия животных; дезрастворы: 5%-й раствор карболовой кислоты или 3%-й раствор лизола; МПБ и скошенный МПА, бактериологические петли, стерильные пастеровские пипетки; предметные стекла, набор красок для окрашивания мазков-отпечатков. Вируссодержащий материал, трупы лабораторных животных, пенициллин, стрептомицин, стерильные инструменты для вскрытия, раствор Хенкса, пробки резиновые, пенициллиновые флаконы, стерильные марлевые салфетки, колбы с бусами, пробирки, колбочки на 50 мл, воронка, пробирки центрифужные, физиологический раствор, штативы, центрифуга, таблицы по теме. Аллергены, новокаин 0,5 % , термометры, шприцы на 1мл, 2мл, безъигольный инъектор, глазные пипетки, иглы для внутрикожного введения, инъекционные иглы, кутиметр, ножницы, спирт 70%, вата. [стр. 16 ⇒]

Самостоятельная работа студентов: а) проведение биопробы на лабораторных животных; б) поведение аллергического исследования на лабораторных животных. 4. Подведение итогов занятия. Методические указания Из лабораторных животных удобнее использовать кроликов белых мышей, которые по сравнению с морскими свинками более выносливы, но, в противоположность белым крысам, не агрессивны. Животных используют только для отработки методов их экспериментального заражения, применяя стерильный физраствор. При вскрытии белых мышей их помещают в кювету на слой воска, поверх которого кладут лист бумаги. Прикрепляют труп мыши препаровальными иглами. После вскрытия труп заворачивают в эту же бумагу и переносят в автоклавную. МИКРОБИОЛОГИЯ И МИКОЛОГИЯ В ходе самостоятельной работы студентов необходимо 1. Заразить лабораторных животных (белые мыши, морские свинки, кролики) различными способами: подкожно, внутримышечно, внутрибрюшинно, внутривенно. В качестве материала для введения использовать стерильный физиологический раствор. 2. Вскрыть труп белой мыши, погибшей от заражения вакцинным штаммом возбудителя сибирской язвы (II вакцина Ценковского). 3. Приготовить мазки-отпечатки из органов, окраска по Граму на капсулу, провести микроскопию. Посев из внутренних органов на МПА и МПБ. 4. Занести в бланк-экспертизу данные по заражению, вскрытию и исследованию трупа животного. Вопросы домашнего задания 1. С какой целью проводят заражение лабораторных животных 2. Какие виды лабораторных животных используют для экспериментального заражения 3. Какие методы используют для заражения животных 4. В каких условных единицах измеряют вирулентность микроорганизмов 5. Раскрыть сущность метода бактериологического исследования трупа животного. ВИРУСОЛОГИЯ И БИОТЕХНОЛОГИЯ В ходе самостоятельной работы студентов необходимо 1. Отработка приемов фиксации и экспериментального заражения лабораторныхживотных всеми доступными методами. 2. Произвести внутрикожное заражение лабораторных животных (кролика вирусом осповакцины). 3. Спрогнозировать симптомы болезни. 4. Вскрыть лабораторное животное с целью обнаружения патологоанатомических изменений и получения вируссодержащего материала. 5. Получение мазков-отпечатков. Вопросы домашнего задания 1. Какие виды лабораторных животных и в каких целях используют в вирусологии. 2. Какие наиболее распространенные методы экспериментального заражения вы знаете. 3. Каковы признаки размножения вируса в организме лабораторного животного. 4. В чем диагностическое значение положительных результатов биопробы. 5. Что такое «слепой» пассаж. 6. На чем основан выбор органа, извлекаемого в качестве вирус содержащего материала при вскрытии. Издание 1 страница 17 из 28... [стр. 17 ⇒]

Одни ученые считают, что инфекционным агентом является видоизмененный PrP клеток, который, контактируя со здоровой клеткой, изменяет конформацию белка или же активизирует фермент, вызывающий модификацию клеточного PrP. Данная гипотеза плохо согласуется с установленным фактом наличия нескольких генетических штаммов у отдельных возбудителей прионных болезней. Диагноз на медленные инфекции основывается на эпизоотологических и клинических данных, а также результатах лабораторного исследования. Для лабораторной диагностики отправляют голову погибших животных. Лабораторная диагностика заключается в выявлении характерных изменений в головном мозгу гистологическим методом, а в спорных случаях – в постановке биопробы на белых мышах. Гистологическое исследование заключается в обнаружении патогистологических изменений в сером мозговом веществе стволовой части головного мозга, главным образом в продолговатом мозге и варолиевом мосту. Неспецифические альтеративные изменения представлены набуханием нейронов, очаговым или диффузным распылением хроматофильного вещества, хроматолизом, неравномерным гиперхроматозом. Специфическими изменениями, имеющими диагностическое значение, считается массовая вакуолизация нейронов, приводящая к лизису нервных клеток. За диагностическое количество принимается обнаружение не менее 15 вакуолизированных нейронов. В сомнительных случаях возможна постановка биопробы. Биопроба проводится на белых мышах, которых заражают интрацеребрально суспензией ткани головного мозга больного животного. При этом у экспериментальных животных отмечается формирование в клетках головного мозга характерных патогистологических изменений. Cпецифическими методами диагностики прионных болезней является иммуноблотниг, основанный на идентификации белка PrPSc с помощью меченных иммунолобулинов в тканях мозга после гомогенизации и электрофорезе в геле, а также иммуногистохимическим методом в замороженных гистосрезах головного мозга. К современным методам диагностики относят также использование ДНКзондов для обнаружения генов, ответственных за генетическую предрасположенность к прионным болезням. [стр. 4 ⇒]

Аденовирусов крупного рогатого скота не способны инфицировать лабораторных животных и РКЭ, поэтому тканевые культуры являются единственной биологической системой для культивирования вируса. В ходе репродукции аденовирусы вызывают развитие в них ЦПД и образование внутриядерных включений. При этом аденовирусы первой подгруппы (серовары 1, 2 и 3) индуцируют образование одного внутриядерного включения неправильной формы на культурах клеток ПЭК, ЛЭК и ТБ. Аденовирусы второй подгруппы продуцируют большое число внутриядерных включений в одной клетке правильной округлой формы, однако они более требовательны к культурам клеток (медленно репродуцируются в культурах клеток ТБ и не размножаются в ПЭК). Гемагглютинирующие свойства аденовирусов КРС неодинаковы, поэтому использование РТГА в ветеринарной практике весьма ограничено. Аденовирусы обладают онкогенными свойствами и способны при введении вызывать образование опухолей у лабораторных животных. Лабораторная диагностика. Решающее значение в постановке диагноза на аденовирусную инфекцию имеет лабораторное исследование, так как сходную патологию могут вызвать вирусы других таксономических групп: парагрипп-3, диареи, респираторно-синцитиальной инфекции и др. Отбор патматериала производится аналогично, как и при парагриппе-3. Подготовка материала по общепринятой методике и включает центрифугирование жидкого материала при 1000 об/мин в течение 10-15 минут. В дальнейшем надосадочную жидкость используют для выделения вируса на культурах клеток, а осадок - для приготовления мазков с целью индикации вирусного антигена в РИФ. Для этого к осадку добавляют 0,5мл физиологического раствора и делают 12 мазков на предметном стекле из каждой пробы. Из патматериала (кусочки органов) также готовят препаратыотпечатки или гистосрезы для иммунофлуоресценции, а затем после измельчения приготавливают 10%-ную суспензию для заражения культур клеток. Полученные мазки, отпечатки, срезы подсушивают в струе воздуха вентилятора, фиксируют в охлажденном ацетоне 20-30 минут и обрабатывают флуоресцирующими сыворотками против I и II подгрупп аденовирусов в течение 45 минут при 37ºС. После трехкратного промывания препаратов в физиологическом растворе его микроскопируют в люминесцентном микроскопе. Яркая зеленая флуоресценция в виде гранул различной формы и величины в ядре и цитоплазме не менее чем 10% клеток позволяет оценить препарат как положительный. Предварительный диагноз ставят при наличии не менее 30% положительных препаратов от общего количества исследованных проб. Выделение вируса. Аденовирусы изолируют на первичнотрипсинизированных или субкультурах клеток эмбрионов крупного рогатого скота (почки, легкие, селезенка) или ТБ. Каждой пробой материала инокулируют не менее 4 пробирок с монослоем. Наблюдение за зараженными культурами клеток проводят в течение 7-14 суток, ежедневно просматривая монослой под малым увеличением микроскопа для выявления ЦПД, которое ха... [стр. 19 ⇒]

Они обладают однотипной наследственностью, имеют минимальное число латентных инфекций, обладаю т высокой восприимчивостью к вирусам. Особенно чувствительны к вирусам ж ивотные-гнотобионты . Работу с животными рекомендуется проводить в настольном боксе или в специальной операционной вивария. Все отходы и трупы погибш их ж ивотн ы х автоклавируют и сж игаю т (см . график 5, стр. 87). М ет оды и техника зараж ения животных. Лабораторных животных заражают различными вируссодержащими материалами, взятыми от больных людей, от павших и забитых животных и т.п. Исследуемый материал должен быть взят с учетом патогенеза данного вирусного заболевания и тропизма возбудителя. Характеристика вируссодержащ их материалов, подготовка и обработка их для вирусологических исследований рассмотрены в данной главе. Способы заражения лабораторных животных, применяемые при вирусологических исследованиях в основном такие же, как при заражении другими инфекционными материалами. Применяют подкожное, накожное, внутрикожное, внутримышечное, внутрибрюшинное, внутривенное, пероральное, интраназальное, интрацеребральное заражение и др. Выбор способа заражения животных проводят с учетом тропизма исследуемого вируса к определенным тканям. Ниже приводятся два метода заражения — интраназальное (в нос) и интрацеребральное (в мозг), которы е имею т некоторые особенности. И нт раназальное зараж ение. Этот метод используют для выделения пневмотропных (респираторных) вирусов. Заражение мышей проводится под эфирным наркозом. Ж и вотны х помещают под стеклянный колпак или в закры тую стеклянную банку, в которую положен к усок ваты, пропитанный эфиром. Эфир следует давать в значительной дозе в течение сравнительно короткого срока для создания непродолжительного, но глубокого сна. П оказателем достаточности наркоза является глубокое, ритмичное дыхание животного, отсутствие кашлевых толчков во время заражения. [стр. 87 ⇒]

Основным способом диагностики вирусоносительства и ВИЧинфекции является иммуноферментный метод. Однако в связи с тем, что поверхностный белок вируса имеет сродство с рецепторами некоторых клеток человека, в организме могут появляться антитела, родственные антителам против поверхностного белка. В этом случае могут быть ложнопозитивные результаты ИФА. Поэтому все положительно реагирующие сыворотки подвергаются дополнительному анализу с помощью иммуноблотинга. Для лечения ВИЧ-инфекции необходимо найти или синтезировать препараты, эффективно подавляющее активность обратной транскриптазы или вирусной протеазы. Для специфической профилактики необходимо создание вакцины, которая бы обеспечивала формирование эффективного клеточно-опосредованного иммунитета на основе вирусспецифических ЦТЛ. Вируснейтрализующие антитела в данном случае не действенны. Раздел 10. Современные методы вирусологических исследований и диагностики вирусных инфекций. ИСПОЛЬЗОВАНИЕ ЛАБОРАТОРНЫХ ЖИВОТНЫХ Первым для изучения свойств вируса бешенства стал использовать лабораторных животных Л. Пастер. Использование лабораторных животных позволяет выделять вирусы, по симптомам определять характер вирусной инфекции, поддерживать лабораторные штаммы вирусов, сохранять антигенные свойства и активность вирусов, получать диагностические и лечебно-профилактические вирусные препараты. В качестве лабораторных животных чаще всего используются белые мыши, хомяки, морские свинки, кролики, реже обезьяны; из птиц – куры, гуси, утки. К лабораторным животным предъявляют весьма строгие требования. Животные должны быть в достаточной степени восприимчивы к инфекции данным вирусом и не нести в себе латентной инфекции и каких-либо паразитов. В эксперимент берут животных одного пола, возраста, массы, лучше из одного питомника или партии. После заражения особей вируссодержащим материалом важно своевременно и правильно взять материал для дальнейшего исследования. Результаты выделения вируса считают положительными, если у животного после соответствующего инкубационного периода развиваются симптомы инфекции. В последние годы чаще применяют новорожденных животных (более чувствительных к вирусам), «стерильных животных» и животных чистых линий с известной наследственностью (инбредные, или линейные, животные). 49... [стр. 50 ⇒]

В моче и кале вирус погибает через 30 ч, в шкурах – 24 ч, в трупах – несколько часов; чувствителен к действию дезинфицирующих средств (2%-ная карболовая кислота, 2%-ная щёлочь, 2%-ный крезол и лизол и др.). Антигенные свойства вируса. В структуре вируса установлено 5 вирусспецифических полипептидов, антигенных вариантов вируса нет. Он имеет антигенное и иммунологическое родство с вирусом чумы плотоядных и вирусом кори. В организме животных вирус индуцирует образование нейтрализующих, комплементсвязывающих, антигемагглютинирующих и преципитирующих антител. Экспериментальная инфекция легко удаётся обычно у крупного рогатого скота при введении вируссодержащей крови реr os, подкожно или внутримышечно. Заразить можно слюной, истечениями из влагалища. Восприимчивы также верблюды и олени. Локализация и выделение вируса. Вирус накапливается во многих органах и тканях, но высокой концентрации достигает в лимфоузлах, слизистой оболочке сычуга, лёгких и почках, также присутствует в крови, мозговой ткани, мышечной ткани, спинно-мозговой жидкости. Выделяется преимущественно с истечениями из носа и глаз. Вирусоносительство у животныхреконвалесцентов практически не доказано. Гемагглютинирующие свойства. Концентрированный вирус агглютинирует эритроциты обезьян и в меньшей степени – кроликов, морских свинок, мышей, крыс. Для культивирования вируса используют первичные культуры клеток почки телёнка, ягнёнка, эмбриона коровы и перевиваемые клетки МДВК, СПЭВ, ПТП и др. ЦПД вируса развивается медленно и характеризуется появлением цитоплазматических включений в инфицированных клетках, в том числе и симпластах. Лабораторная диагностика. Материал для исследования берут от больных (кровь, пунктат лимфоузлов) или убитых и павших (предлопаточные лимфоузлы, селезёнка) животных. Лабораторная диагностика предусматривает: 76... [стр. 76 ⇒]

Экспериментальные модели для некоторых вирусов Наименование вируса Экспериментальная модель Вирус бешенства мыши, кролики Вирус Коксаки мыши - сосунки Вирус полиомиелита обезьяны, хлопковые крысы Вирус гриппа мыши, хорьки Вирус ящура морские свинки Вирус клещевого мыши /новорожденные или молодые, энцефалита весом 8-10 г/ Возраст экспериментального животного существенно влияет на воспроизведение инфекции. Например, при заражении вирусами Коксаки используют мышей-сосунков семидневного возраста, которые более восприимчивы к этим инфекциям нежели 3-4недельные мыши. Необходимым условием успешного выделения вирусов является использование животных, свободных от латентных (скрытых) инфекций вирусной, бактериальной или протозойной этиологии, которые нередко встречаются у многих видов лабораторных животных. К таким заболеваниям относятся вирусные пневмонии, вирусный энцефаломиелит белых мышей, протозойный энцефалит многих млекопитающих и птиц и др. Для вирусологической работы чаще всего используют так называемые "чистые линии" экспериментальных животных. Они обладают однотипной наследственностью, имеют минимальное число латентных инфекций, обладают высокой восприимчивостью к вирусам. Особенно чувствительны к вирусам животныегнотобионты. Работу с животными рекомендуется проводить в настольном боксе или в специальной операционной вивария. Все отходы и трупы погибших животных автоклавируют и сжигают, (см. граф 5, стр. 43). Методы и техника заражения животных. Лабораторных животных заражают различными вируссодержащими материалами, взятыми от больных людей, от павших и забитых животных и т.п. Исследуемый материал должен быть взят с учетом патогенеза данного вирусного заболевания и тропизма возбудителя. Характеристика вируссодержащих материалов, подготовка и обработка их для вирусологических исследований рассмотрена в главе 1. 40... [стр. 35 ⇒]

Свищи прямой кишки можно еще симулировать тем, что у заднего прохода делают нарез кожи. Затем в ранку вкладывают ватный тампон или растягивают ее пальцами. Повторяя постоянно эту операцию, добиваются образования полости, симулирующей свищ прямой кишки. Искусственный геморрой Искусственное вызывание геморроя или значительное ухудшение имевшегося заболевания связано с созданием таких условий, которые благоприятствуют застою и затруднению оттока крови из вен геморроидального сплетения. Это может быть вызвано, например, введением на продолжительное время (сутки и больше) в прямую кишку большого тампона. Умышленные продолжительные запоры, горячие ванны, прием слабительных, натуживание, раздражающие клизмы — все, что благоприятствует застою, способствует развитию геморроя. В больничной обстановке, при наблюдении поддерживание геморроя представляет значительные трудности, поэтому все явления довольно быстро проходят. Легко вызывается геморрой у предрасположенных к этому заболеванию. Искусственное выпадение прямой кишки Выпадения прямой кишки добиваются тем, что вводят в нее инородные предметы, которые затем быстрым подтягиванием за привязанную веревку или шнурок извлекают, выворачивая при этом стенку кишки. Вводят мешочок с сухим горохом, губку, тампоны и через некоторое время (например через сутки), когда эти предметы набухают и плотно прилегают к слизистой, они с силою извлекаются. При этом выворачивается стенка прямой кишки. Повторяя подобную операцию несколько раз, добиваются стойкого выпадения прямой кишки. Или же в кишку вводят узким концом конический кусок свинца длиною 6−8 см и быстро его вытягивают за веревку, привязанную за широкий конец. Выпадение обычно ограничивается слизистой оболочкой кишки и не бывает стойким. Горячие ванны, длительные запоры могут поддерживать выпадение кишки. Диагностика. Описанные выше приемы настолько грубы, что обычно сопровождаются большей или меньшей травматизацией тканей. Поэтому в свежих случаях на слизистой оболочке кишки и вокруг заднего прохода можно обнаружить кровоизлияния, ссадины. На слизистой оболочке могут быть обнаружены также оставшиеся частицы тампона. Вообще это заболевание встречается не так уже часто, поэтому появление группы лиц с выпадением прямой кишки, особенно в одной местности или части, должно явиться указанием для врача на возможность членовредительства. Искусственные поносы Вызвать понос или добиться ухудшения имеющегося поноса не представляет значительных трудностей, причем добиваются даже развития тяжелых форм, напоминающих дизентерию. Для этого пользуются различными слабительными, частыми клизмами. Резкое раздражение слизистой оболочки толстой кишки от этих мероприятий ведет к появлению частых, кровянистых испражнений и тенезмам. Подобное состояние получается от частого приема касторового масла, слабительной соли, кротонового масла и даже мышьяка. Последние два средства дают особенно тяжелые поносы, симулирующие дизентерию. Правильный диагноз в таких случаях возможен только в госпитальной обстановке при условии тщательного наблюдения и обследования. Испытуемые могут подмешивать в испражнения кровь, насосанную из десен или добытую другим путем; кровь животных. Лабораторные исследования в таких случаях необходимы. Членовредительство в области органа слуха Искусственные заболевания уха не составляют редкости и являются одной из распространенных форм членовредительства. Объясняется это легкой доступностью и яркой симптоматикой искусственно вызванного ушного заболевания в виде ряда объективных весьма убедительных признаков. Повреждения могут касаться различных отделов слухового аппарата. Вызванные искусственно заболевания приводят подчас к весьма тяжелым осложнениям, иногда даже со смертельным исходом. За исключением слишком грубых и явных случаев членовредительства, искусственные заболевания уха требуют специального обследования, и диференциальный диагноз может быть установлен специалистом-отиатром. Один из известных в настоящее время способов 56... [стр. 57 ⇒]

) и экзогенных (социальных и природных) факторов. Эпидемиологическим методом считается такой, который позволяет связать воедино основные составляющие процесса изменения здоровья: а. коллектив здоровых людей, подверженных влиянию определенных факторов; б. факторы окружающей среды, влияющие на уровень здоровья людей; в. условия, в которых эти факторы влияют (социальные и природные). С его помощью изучают здоровье не только отдельного человека, но и коллективов (детей посещающих дошкольные образовательные учреждения, школы и т.д.). Заключительным этапом эпидемиологического исследования здоровья населения является построение математических моделей, описывающих зависимость уровня здоровья от исследуемых факторов, выявления факторов риска. Метод санитарного обследования. Метод основан на собственных визуальных наблюдениях врача, опросе населения, обслуживающего персонала. По специально разработанной карте проводится санитарное описание наблюдаемого фактора и составляется заключение о санитарном состоянии обследуемого объекта (дошкольного образовательного учреждения, школы, водоисточника, больницы, общежития, промышленного предприятия). Углубленное санитарное обследование проводится с использованием инструментально-лабораторных исследований факторов окружающей среды. По результатам санитарного обследования разрабатываются мероприятия по охране здоровья и уменьшению неблагоприятного действия выявленных факторов на условия труда и жизни населения. Метод естественного гигиенического эксперимента, заключается в том, что врач в реальных условиях трудовой, воспитательной, учебной и бытовой деятельности человека изучает факторы окружающей среды и социальные условия, дает им качественную и количественную характеристики и выявляет их влияние на здоровье и условия жизни людей в сравнении с контролем. Метод лабораторного гигиенического эксперимента. Сущность метода состоит в том, что в лабораторных условиях моделируется ситуация, проводятся исследования по обоснованию гигиенических нормативов (в основном на лабораторных животных). Лабораторный гигиенический эксперимент может проводиться с целью изучения влияния факторов окружающей среды на здоровье людей. Современные методы физико-химического анализа Хроматографический метод: Хроматография – физико-химический метод разделения сложных смесей. Метод основан на различии в 8... [стр. 8 ⇒]

Глава 42 ВЕТЕРИНАРНЫЕ ТРЕБОВАНИЯ при ввозе на таможенную территорию Евразийского экономического союза и (или) перемещении между государствами-членами лабораторных животных (мышей, песчанок, крыс, морских свинок, кроликов, хомяков, кошек, собак, нечеловекообразных приматов, птиц), а также их оплодотворенных яйцеклеток (зигот) и эмбрионов К ввозу на таможенную территорию Евразийского экономического союза и (или) перемещению между государствами-членами допускаются животные (мыши, песчанки, крысы, морские свинки, кролики, хомяки, кошки, собаки, нечеловекообразные приматы, птицы), предназначенные для использования в лабораторных исследованиях и (или) научных целях (далее – лабораторные животные), а также их оплодотворенные яйцеклетки (зиготы) и эмбрионы, предназначенные для использования в указанных целях (далее – оплодотворенные яйцеклетки (зиготы) и эмбрионы). В целях настоящей главы под лабораторными животными-донорами понимаются лабораторные животные, от которых получены оплодотворенные яйцеклетки (зиготы) или эмбрионы. Лабораторные животные и лабораторные животные-доноры должны быть клинически здоровы, не получены от животных, отловленных в дикой природе, и происходить из специализированных питомников, официально свободных от заразных болезней животных (в том числе в день отбора оплодотворенных яйцеклеток (зигот) или эмбрионов). Статус здоровья лабораторных животных и лабораторных животныхдоноров должен быть подтвержден результатами лабораторных тестов, проведенных в соответствии с рекомендациями МЭБ. Генетический статус лабораторных животных и лабораторных животных-доноров должен быть известен. Ввозимые на территорию Евразийского экономического союза лабораторные животные, их оплодотворенные яйцеклетки (зиготы) и эмбрионы должны сопровождаться документацией, содержащей информацию о виде животных, породе (для грызунов – также о линии или стоке) и проведенных генетических вмешательствах (для генетически измененных животных). В оплодотворенных яйцеклетках (зиготах) и эмбрионах не должны содержаться патогенные и токсикогенные микроорганизмы. Их отбор, хранение и транспортировка должны осуществляться в соответствии с рекомендациями Кодекса МЭБ. При транспортировке лабораторные животные не должны иметь контакт с другими животными. Лабораторные животные транспортируются в новых контейнерах или контейнерах, прошедших очистку и дезинфекцию с целью уничтожения возбудителей болезней. Каждый контейнер должен быть маркирован этикеткой и пронумерован. [стр. 66 ⇒]

Живя в лагере у озера Танганьика, понимаешь, что значение водопровода, электричества, канализации и телефона сильно преувеличено. Можно прекрасно прожить и без них. Каждый день нужно было рано встать, быстро позавтракать и отправиться в путь до восхода солнца. Следовало найти шимпанзе, и для этого в лагере было несколько следопытов. К счастью, шимпанзе очень шумные, поэтому их легко обнаружить. Шимпанзе не путешествуют все вместе, а разбиваются на небольшие группы, в каждую из которых входит несколько особей. Чтобы не потерять друг дружку при ограниченной видимости, они полагаются на перекличку. Следуя, например, за взрослым самцом, можно видеть, что он периодически останавливается, вскидывает голову и прислушивается к крикам своих находящихся в отдалении собратьев. Можно заметить, как он принимает решение: крикнуть в ответ, молча двинуться в их сторону (иногда так поспешно, что едва успеваешь за ним, запутываясь в лианах) или беззаботно продолжить свое движение, как будто в том, что он услышал, не было ничего важного. К тому времени Калунде был самым старшим самцом, размером вполовину меньше взрослого самца в расцвете сил — ему было около сорока лет, и он несколько усох. Однако, несмотря на свой почтенный возраст, он продолжал участвовать в политических интригах, часто сопровождая и вычесывая бета-самца во время долгих отлучек альфа-самца. Альфа-самец путешествовал к границам территории группы шимпанзе в сопровождении готовой к оплодотворению самки. Известно, что самцы высокого ранга в компании с самкой могут отсутствовать несколько недель, чтобы избежать конкуренции. Я узнал о непредвиденном возвращении альфа-самца только потому, что Тоши сказал мне об этом вечером, но я заметил сильное беспокойство в группе самцов, за которыми следовал весь день. Они неустанно бегали вверх-вниз по холмам, совершенно меня измотав. О возвращении альфа-самца возвестило его характерное уханье и барабанная дробь по пустым стволам деревьев, что привело всех в большое возбуждение. В последующие дни было любопытно наблюдать, как Калунде то вычесывает вернувшегося альфа-самца, то проводит время с бета-самцом, как будто не может решить, на чьей он стороне. Калунде представлял собой превосходную иллюстрацию тактики, которую Тоши назвал «непостоянством лояльности»{247}. У нас было множество вопросов для обсуждения, особенно касающихся сравнения диких и содержащихся в неволе шимпанзе. Очевидно, что между ними есть существенные различия. Однако все не так просто, как полагают многие, не понимая, зачем вообще изучать животных в неволе. У этих двух типов исследования различные задачи, и нам нужны и тот и другой. Полевая работа необходима, чтобы понять общественную жизнь любого животного в естественных условиях. Для каждого, кто хочет понять, каким образом возникло типичное поведение данного вида, не существует другого способа, помимо исследований в природе. Я побывал на многих полевых станциях, где изучали приматов: капуцинов в Коста-Рике, паукообразных обезьян в Бразилии, орангутангов на Суматре, бабуинов в Кении и тибетских макак в Китае. Я считаю, что возможность познакомиться с экологическими условиями, в которых обитают дикие приматы, и услышать мнение коллег о проблемах, которые их волнуют, позволяет получить очень много информации. В настоящее время полевые исследования носят научный и систематизированный характер. Дни, когда данные небрежно заносились в записную книжку, давно прошли. Сбор информации проводится систематически в течение долгого времени, данные заносятся в портативные цифровые устройства и дополняются образцами мочи и кала, позволяющими проводить анализ гормонов и ДНК. Эта тяжелая работа значительно расширила наши представления о сообществах диких животных. Тем не менее, чтобы понять тонкости поведения и лежащие в их основе познавательные способности, полевой работы недостаточно. Никто не станет оценивать умственное развитие ребенка, наблюдая, как он бегает в школьном дворе со своими друзьями. Обычные наблюдения не позволяют получить представление о сознании ребенка. Вместо этого мы приводим ребенка в помещение и предлагаем ему тест на раскрашивание, деревянный конструктор, компьютерную игру и т. д. Таким образом мы оцениваем умственные способности человека, и это также лучший способ определить, насколько умны животные. Полевые исследования могут дать подсказку или помочь выдвинуть предположение, но редко позволяют прийти к точным выводам. Можно, например, увидеть диких шимпанзе, раскалывающих камнями орехи, но невозможно выяснить, как они открыли эту технику или научились ей друг у друга. Для этого необходимы тщательно проведенные эксперименты с необученными шимпанзе, которые получили камни и орехи в первый раз. Человекообразные обезьяны, содержащиеся в неволе в просчитываемых условиях (в виде небольшой группы на просторном открытом пространстве), дают дополнительную возможность близкого знакомства с их естественным поведением, которую невозможно обеспечить в природе. Здесь поведение обезьян можно наблюдать и записывать на видео гораздо полнее, чем в джунглях, где они в самый интересный момент исчезают в подлеске. Полевым исследователям часто приходится реконструировать события на основе фрагментарных наблюдений. Чтобы проделать это, нужно большое мастерство, которым исследователи, несомненно, обладают, но подобные результаты не идут ни в какое сравнение с подробными данными, которые можно получить, планомерно наблюдая за поведением в неволе. Если, например, изучается мимика, то необходимо хорошее освещение и камера с высоким разрешением, позволяющая получать увеличенное и замедленное изображение, что труднодостижимо в полевых условиях. Неудивительно, что изучение общественного поведения и познавательных способностей животных содействовало объединению усилий ученых, работающих с животными в естественных условиях и в неволе. Оба направления представляют собой разные части одной головоломки. В идеале для подтверждения теорий познания используются данные из обоих источников. Полевые наблюдения часто инициируют экспериментальные исследования. И наоборот, наблюдения в неволе — такие как открытие, что шимпанзе мирятся после ссор, — побуждают к поиску подобного явления в природных условиях. Если же результаты, полученные в лаборатории, противоречат данным о поведении данного вида в дикой природе, значит, пришло время применить другой подход{248}. В частности, в вопросах культуры животных лабораторные и полевые исследования теперь часто дополняют друг друга. Ученые, работающие в естественных условиях, определяют географическое разнообразие поведения данного вида, предполагая место происхождения определенного навыка и его последующий перенос в другие группы. Но они часто не могут учесть альтернативные объяснения, такие как генетические различия между популяциями. Вот почему необходимы эксперименты, убеждающие, что тот или иной обычай может перениматься индивидуумами путем простого наблюдения друг за другом. Способен ли данный вид к подражанию? Если да, то это... [стр. 72 ⇒]

Смотреть страницы где упоминается термин "животные лабораторные": [30] [4] [31] [31] [81] [8] [301] [25] [79] [125] [128] [176] [186] [381] [1] [3] [30] [18] [18] [195] [195] [25] [34] [174] [174] [175] [81] [108] [75] [97] [51] [7] [43] [185] [11] [875] [803] [19] [78] [8] [113] [1] [1] [1] [1] [1] [1] [1] [1] [1]