Справочник врача 21

Поиск по медицинской литературе


Лаборатория бактериологическая




5. гинекологическое отделение с операционными; 13.6. клинико-диагностическое отделение: клинико-диагностическая лаборатория; бактериологическая лаборатория; лаборатория молекулярной диагностики (при наличии потребности); 13.7. отделение лучевой и магнитно-резонансной диагностики; 13.8. организационно-методический отдел; 13.9. административно-хозяйственное подразделение со вспомогательными службами: администрация; бухгалтерия; отдел кадров; отдел снабжения; экономическая служба; технические службы; аптека; централизованное стерилизационное отделение; пищеблок; прачечная; дезинфекционное отделение; гараж. 14. В структуре Федерального перинатального центра дополнительно могут предусматриваться: симуляционно-тренинговый центр; отдел информационных технологий; отделение банка крови. [стр. 175 ⇒]

1. Характеристика микробиологических и иммунологических лабораторий Вся работа с микробами проводится в лабораториях, которые в зависимости от основных задач могут быть научно-исследовательскими, диагностическими или производственными. В системе органов здравоохранения имеются: • клинико-диагностические лаборатории общего или специального (биохимическая, бактериологическая, иммунологическая, цитологическая и др.) типов, входящие в состав больниц, поликлиник, диспансеров и других лечебно-профилактических учреждений; • бактериологические лаборатории Госсанэпиднадзора (ГСН); • санитарно-бактериологические лаборатории ГСН; • санитарно-химические лаборатории ГСН; • центральные (ЦНИЛ), проблемные, отраслевые, учебные лаборатории вузов; • специализированные лаборатории (особо опасных инфекций и др.). В настоящее время лаборатории и более крупные лабораторные учреждения (отделы, институты, производственные предприятия), как правило, специализированные и работают с той или иной группой микробов. С вирусами работают в вирусологических лабораториях, располагающих соответствующим оборудованием и использующих специальные методы исследования. Существуют микологические и протозоологические лаборатории. Специализированный характер... [стр. 10 ⇒]

Часть III ЧАСТНАЯ МИКРОБИОЛОГИЯ | ГЛАВА 15. МИКРОБИОЛОГИЧЕСКАЯ И ИММУНОЛОГИЧЕСКАЯ ДИАГНОСТИКА 15.1. Организация микробиологической и иммунологической лабораторий Вся работа с микробами проводится в лабораториях, которые в зависимости от основных задач могут быть научно-исследовательскими, диагностическими или производственными. Лаборатория — это учебное, научное или производственное учреждение или же подразделение учреждения/предприятия, выполняющее экспериментальные, контрольные или аналитические исследования. В системе органов здравоохранения имеются: 1. Клинико-диагностические лаборатории общего или специального (биохимическая, бактериологическая, иммунологическая, цитологическая и др.) типов, входяшие в состав больниц, поликлиник, диспансеров и других лечебно-профилактических учреждений. 2. Бактериологические лаборатории госсанэпиднадзора. 3. Санитарно-бактериологические лаборатории госсанэпиднадзора. 4. Санитарно-химические лаборатории госсанэпиднадзора. 5. Центральные (ЦНИЛ), проблемные, отраслевые. учебные лаборатории вузов. 6. Специализированные лаборатории (особо опасных инфекций и др.). Углубление знаний о природе микробов и разделение инфекций на бактериальные, вирусные, грибковые, протозойные, хламидийные, риккетсиозные и другие отражается и на специфике работы микробиологических лабораторий. В настоящее время лаборатории и более крупные лабораторные учреждения (отделы, институты, производственные предприятия), как правило, специализированы и работают с той или иной группой микробов. Все работы с вирусами проводятся в вирусологических лабораториях, оснащенных... [стр. 308 ⇒]

— определяется клинической формой болезни. Кроме того, на исследование можно бргпъ воду и пищевые продукты. В природных очагах туляремии проводят плановые систематические исследования для выделения во Хулителя туляремии от грызунов. Для диагнос гики применяют все методы микробиологической диагностики. Исследование проводят в режимных лабораториях. Бактериологический метод в диа! мостике туляремии у человека редко дает положительные результаты. Чистую культуру, как правило, выделяют после накопления ее на восприимчивых лабораторных животных. Для биопробы применяют белых мышей и морских свинок. Мышей заражают подкожно, морских свинок— внутрибрюшинно, животные погибают на 3—6-е сутки, иногда позднее. Зараженных животных содержат в особых условиях (как при диагностике чумы) и наблюдают за ними в течение 6—14 дней. Если экспериментальные животные на протяжении 7—15 дней не погибают, их забивают на 15—20-й день и трупы вскрывают. При наличии туляремии обнаруживают патологоанатомические изменения в виде продуктивного процесса с некрозом. Чистую культуру выделяют из внутренних органов на желточной среде, глюкозоцистеи новом кровяном агаре, среде Емельяновой и др. При идентификации опираются на морфологию и тинкюриальные свойства возбудителя, отсутствие роста па МПА, агглютинацию гомологичной сывороткой, патогенность для белых мышеи и морских свинок. Чистую культуру можно выделить, заражая 12-дневные куриные эмбрионы в желточный мешок. Для выделения чистой культуры возбудителя из воды последнюю центрифугируют или фильтруют через бактериальные фильтры и полученным осадком заражают лабораторных животных. При исследовании пищевых продуктов их промывают мясопептонным бульоном — МП Б. цетрифугируют и осадком заражают лабораторных животных. Параллельно с бактериологическим исследованием из исследуемого материала готовят мазки-отпечатки, которые окрашивают по Романовскому—Гимзе. В мазках из органов можно обнаружить мелкие кокковидные и палочковидные бактерии, которые распола... [стр. 395 ⇒]

Часть III ЧАСТНАЯ МИКРОБИОЛОГИЯ ТИкЛ ГЛАВА 15. МИКРОБИОЛОГИЧЕСКАЯ И ИММУНОЛОГИЧЕСКАЯ ДИАГНОСТИКА 15Л. Организация микробиологической и иммунологической лабораторий Вся работа с микробами проводится в лабораториях, которые в зависимости от основных задач могут быть научно-исследовательскими, диагностическими или производственными. Лаборатория — это учебное, научное или производственное учреждение или же подразделение учреж дения/предприятия, вы полняющее экспериментальные, контрольные или аналитические исследования. В системе органов здравоохранения имеются: 1. К линико-диагностические лаборатории общего или специального (биохимическая, бактериологическая, иммунологическая, ци тологическая и др.) типов, входящие в состав больниц, поликлиник, диспансеров и других лечебно-профилактических учреждений. 2. Бактериологические лаборатории госсанэпиднадзора. 3. Санитарно-бактериологические лаборатории госсанэпиднадзора. 4. Санитарно-химические лаборатории госсанэпиднадзора. 5. Центральные (ЦНИ Л), проблемные, отраслевые, учебные лаборатории вузов. 6. Специализированные лаборатории (особо опасных инфекций и др.). Углубление знаний о природе микробов и разделение инфекций на бактериальные, вирусные, грибковые, протозойные, хламидийные, риккетсиозные и другие отражается и на специфике работы микробиологических лабораторий. В настоящее время лаборатории и более крупные лабораторные учреждения (отделы, институты, производственные предприятия), как правило, специализированы и работают с той или иной группой микробов. Все работы с вирусами проводятся в вирусологических лабораториях, оснащенных... [стр. 309 ⇒]

7. Номенклатура микробиологических лабораторий Вся работа с микробами проводится в лабораториях, которые в зависимости от основных задач могут быть научноисследовательскими, диагностическими или производственными. В системе органов здравоохранения имеются: 1) клиникодиагностические лаборатории общего или специального (биохимическая, бактериологическая, иммунологическая, цитологическая и др.) типов, входящие в состав больниц, поликлиник, диспансеров и других лечебнопрофилактических учреждений; 2) бактериологические лаборатории; 3) санитарнобактериологические лаборатории; 4) санитарнохимические лаборатории; 5) центральные (ЦНИЛ), проблемные, отраслевые, учебные лаборатории вузов; 6) специализированные лаборатории (особо опасных инфекций и др.). В настоящее время лаборатории и более крупные лабораторные учреждения (отделы, институты, производственные предприятия), как правило, специализированные и работают с той или иной группой микробов. С вирусами работают в вирусологических лабораториях, располагающих соответствующим оборудованием и использующих специальные методы исследования. Существуют микологические и протозоологические лаборатории. Специализированный характер приобретают и бактериологические лаборатории, в которых работа концентрируется на определенных группах бактерий, например риккетсиозные, туберкулезные, лептоспирозные, анаэробные и др. Иммунологические исследования проводятся в иммунологических лабораториях, хотя отдельные виды исследований могут выполняться и в микробиологических лабораториях, например серодиагностика инфекционных болезней. Лабораторная работа с патогенными микробами проводится в специально оборудованных лабораториях, обеспечивающих режим работы и технику безопасности, исключающих возможность заражения персонала и утечку микробов за пределы лаборатории. Необходимость чет... [стр. 21 ⇒]

Устройство микроскопа 1. Оптическая часть: окуляр, объектив, конденсор Аббе, осветительный прибор (зеркальце). 2. Механическая часть: штатив, подставка, предметный столик, тубус, тубусодержатель, макровинт, микровинт. Увеличение микроскопа равно произведению увеличения объектива на увеличение окуляра. Все микробиологические исследования по выявлению и идентификации микроорганизмов осуществляются в научно-исследовательских институтах и бактериологических лабораториях центров Госсанэпиднадзора. Для обеспечения требований безопасности при работе с микроорганизмами III—IV групп патогенности (см. приложения 7.1) и поточности продвижения потенциально инфицированного материала в бактериологической лаборатории выделяют «чистую» и «заразную» зоны. В состав бактериологической лаборатории входят: ❖ регистратура (приемная) — производится прием и регистрация поступившего для исследования материала, дается номер отобранной пробе; ❖ средоварная — приготовление питательных сред из сухих; ❖ препараторская — подготовка лабораторной посуды, ватно-марлевых пробок, тампонов и т. д.; 26... [стр. 32 ⇒]

Получение образцов мокроты должно предшествовать началу антибактериальной терапии. Однако, если это невозможно, этитропную терапию начинают до микробиологических исследований. Для повышения результативности исследования образец должен быть доставлен в бактериологическую лабораторию не позднее 2 ч от момента забора. В лаборатории проводится микроскопия мокроты, ее посев осуществляется только в тех случаях, когда полученные образцы удовлетворяют соответствующим требованиям: • более 25 полиморфно-ядерных лейкоцитов и менее 10 эпителиальных клеток в поле зрения при малом увеличении (рекомендации Американского общества инфекционных болезней); • менее 25 эпителиальных клеток в поле зрения при малом увеличении (рекомендации Канадского общества инфекционных болезней). Учитывая низкую чувствительность и специфичность бактериологических и бактериоскопических методов исследования, они проводятся только у госпитализированных больных. В то же время пневмонии, возникшие у больных с иммунодефицитом, подлежат обязательной этиологической расшифровке, т. к. в данном случае выбор антибактериальных препаратов полностью определяется видом возбудителя. Помимо исследования мокроты у госпитализированных больных проводится посев крови. Для увеличения результативности исследований кровь берут из 2 разных вен с интервалом 10 мин и более. Этиологическая диагностика атипичных пневмоний (M. pneumoniae, C. pneumoniae, Legionella spp.) с использованием классических бактериологических методов исследований возможна только в специализированной лаборатории. В клинической практике используются серологические методы: РНИФ, РСК, ИФА. Однако эти методы не позволяют осуществить раннюю этиологическую диагностику и представляют интерес преимущественно с эпидемиологической точки зрения. Более информативными являются методы определения антигенов L. pneumophila и S. pneumoniae в моче, антигенов микоплазм хламидий в мазках из носоглотки и ПЦР, которая в последние годы активно внедряется в клиническую практику. В более редких случаях применяют инвазивные методы диагностики (фибробронхоскопия с количественной оценкой микробной обсемененности, трансторакальная биопсия, транстрахеальная аспирация и т. д.). Основным методом диагностики пневмонии является рентгенография легких, при которой обычно определяется наличие инфильтрации различного размера с неоднородной внутренней структурой, размытым наружным контуром. Учитывая то, что этиологический диагноз пневмонии после проведения дополнительных лабораторных (микробиологических) методов исследования чаще всего установить не удается, главным в лечении внебольничной пневмонии является эмпирический выбор антибактериальных средств. Вероятность наличия у больного того или иного возбудителя во многом определяется возрастом, наличием интеркуррентных заболеваний, тяжестью состояния пациента и другими клинико-эпидемиологическими характеристиками. Наиболее вероятную этиологию заболевания врач может предположить уже при первичном осмотре больного в зависимости от клинической ситуации и дополнительных анамнестических данных (табл. 1.25). Несмотря на то что клиническая и рентгенографическая картина не позволяет выставить точный этиологический диагноз, в  ряде случаев можно заподозрить наиболее вероятных возбудителей пневмонии. При... [стр. 120 ⇒]

Другие специфические осложнения, как то: прободение кишечника и развитие перитонита, а также кишечное кровотечение у детей практически не встречаются. Среди неспецифических осложнений, особенно у детей раннего возраста, встречаются отит и пневмония (чаще как осложнения наслоившейся ОРВИ), инфекция мочевыводящих путей и дисбактериоз кишечника и (чрезвычайно редко) гемолитико-уремический синдром. Диагностика. Диагноз шигеллеза устанавливается на основании клинико-эпидемиологических данных, с обязательным лабораторным подтверждением. Ставить окончательный диагноз шигеллеза на основании только типичной клинической симптоматики не рекомендуется, так как в клинической практике нередко встречаются "дизентериеподобные формы" ОКИ (энтероинвазивный эшерихиоз, салмонеллез, протеоз, кампилобактериоз и др). Без лабораторного подтверждения диагноз шигеллеза можно ставить только в тех случаях, когда имеются четко установленные эпидемиологические данные (в очагах инфекции и при лабораторно расшифрованных груповых вспышках шигеллеза у большинства больных). Для окончательной диагностики используют бактериологический и серологический методы исследования. Копрологический метод, как и результаты ректороманоскопии, имеют вспомогательное значение. Бактериологический метод имеет наибольшее значение. Лучшие результаты дает посев испражнений больного непосредственно у постели, до назначения антибактериальной терапии и с доставкой его в бактериологическую лабораторию в первые два часа с момента забора материала. Для исследования необходимо выбирать частицы испражнений, содержащие патологические примеси, но не кровь. Посев биоматериала производят на селективные среды —Плоскирева, Левина и др. Отрицательный результат бактериологического исследования испражнений дается на 3-5-й, а положительный, как правило, — на 5-7-й день с момента доставки материала в бактериологическую лабораторию. Частота положительных результатов (высев возбудителя и его идентификация), даже при наличии типичных клинических проявлений шигеллеза, не превышает 60-70%. Окончательный клинический диагноз шигеллезов устанавливается всегда с учетом результа397... [стр. 397 ⇒]

В частности, при малярии (особенно при обнаружении P.falciparum) важно определение интенсивности паразитемии. Количественная оценка микрофлоры в мазке, а также вы явление микробных ассоциаций важны в случае необходимости определения этиологической роли условно-патогенных м и кроорганизмов. Известно, что максимальная определяемая концентрация бактерий в мазке из нативного материала составляет 105 клеток в 1 мл. Для большинства видов исследуемого материала этиологически значимым считается обнаружение условно-патогенных бактерий определенного вида в ко н центрации не менее 105—106 клеток в 1 мл, поэтому чувствительность микроскопического метода в большинстве случаев удовлетворяет потребностям клинической микробиологии. Бактериологический метод. П рименение бактериологического метода дает возможность выделить возбудителя в ч и стой культуре из материала, полученного от больного, и идентиф ицировать его на основании изучения ком плекса свойств. Больш инство бактерий способны к культивированию на различных искусственных питательных средах (кроме хламидий и риккетсий), поэтому бактериологический метод имеет важ ное значение в диагностике многих инф екционны х болезней. В случае получения положительного результата бактериологический метод позволяет определить чувствительность выделенного возбудителя к антимикробным препаратам. О днако эф ф ективность указанного исследования зависит от многих параметров, в частности от условий сбора материала и его транспортировки в лабораторию. К основным требованиям, предъявляемым к отбору и транспортировке материала для бактериологического исследования, относят: • взятие материала до начала этиотропного лечения; • соблюдение условий стерильности при сборе материала; • техническую правильность сбора материала; • достаточное количество материала; • обеспечение температурного режима хранения и тран спортировки материала; • сведение к минимальному промежутка времени между сбором материала и посевом на плотные питательные среды. Т ранспортировка материала в лабораторию должна быть осущ ествлена по возможности немедленно, но не более чем в течение 1—2 ч после его взятия. Пробы материала должны находиться при определенном температурном режиме; в частности, стерильные в норме материалы (кровь, сп инном озговая жидкость) хранят и доставляют в лабораторию при 37 °С. Нестерильные материалы (моча, отделяемое дыхательных путей и др.) хранят при комнатной температуре не более 1—2 ч или не более суток при 4 °С (условия бытового холо31... [стр. 31 ⇒]

Процент высеваемости в значительной степени зависит от того, производится ли исследование в ранние дни болезни при наличии типичного слизясто-кровянистого стула или же в более поздние дни, когда стул носит каловый характер. Высеваемость значительно учащается при упорпых повторных исследованиях у одного и того же больного и при использовании для посева свежевыделенпых испражнений по возможности у постели больного в несколько чашек Петри. Б. М. Иовилев обработал результаты бактериологического исследования больных дизентерией, прошедших через один из армейских инфекционных госпиталей. У этих больных были произведены повторные бактериологические исследования (до 3—4 раз); положительный результат получен у 37,8% обследованных больных. Такой показатель высеваемостя хотя и может считаться довольно значительным в условиях армейского госпиталя, тем не менее он значительно отстает от показателей высеваемости в довоенные годы и, безусловно, не исчерпывает возможности бактериологического метода диагностики дизентерии. Анализируя причины относительно низкой высеваемости, автор приходит к выводу, что одной из причин низкого процента положительных результатов являлись особенности клинического течения дизентерии у исследованных им лиц. Среди материалов, поступивших в лабораторию на исследование, испражнения слизисто-калового характера составляли 12,3%, жидкие испражнения—36,1%, кашицеобразные—35,4% и оформленные—16,2%. Сопоставляя эти данные со сроками поступления материала в лабораторию по пятидневкам от начала заболевания, автор указывает, что положительные результаты при направлении в лабораторию слизистокровянистых испражнений, полученных от больных в сроки от первого до 5-го дня болезни, имели место в 58,3% всех исследований. Чем больше были сроки от начала болезни, тем больше снижался процент положительных находок при одном и том же характере присланных в лабораторию испражнений. На второй пятидневке болезни из слизисто-кровянистых испражнений положительный высев составлял 46,4%, па третьей пятидневке—27,7%, а на четвертой пятидневке—лишь 19,2%. Столь же закономерное снижение высеваемости в зависимости от того, па который день болезни производилось исследование, наблюдалось и в отношении испражнений, менее характерных для дизентерии. Так, при жидком стуле в первую пятидневку было получено 46,0% положительных результатов, во вторую—27,4%, в третью—17,8% и в четвертую— 12,1%. Еще более низкие показатели высеваемости со столь же закономерным снижением в зависимости от дня болезни отмечены при кашицеобразном и при оформленном стуле (табл. 71). Приводимые цифровые данные представляют несомненный пнтерес( так как они характеризуют особенности клинического течения дизентерии в годы Великой Отечественной войны, а также качество бактериологического исследования такого рода больных в условиях армейского ИПГ, располагавшегося в армейском, а иногда и в войсковом районе. Из приведенных данных видно, что типичные для дизентерии испражнения наблюдались при поступлении больных в ИГ всего лишь у 12,3% я что 16,0% больных поступали при наличии оформленных испражнений. [стр. 215 ⇒]

При плохом отхождении мокроты, возможно использование отхаркивающих средств накануне забора. Если мокрота не выделяется, возможно проведение ингаляций распыленного ультразвуком солевого раствора, провоцирующего кашель. В некоторых случаях для получения мокроты отсасывают содержимое задней части носоглотки катетером, введенным в нее через носовой ход. Правильно собранная мокрота имеет характерный вид: гнойная или гнойно-слизистая желтого или зеленого цвета с прожилками крови и зелеными включениями. Если мокрота собрана неправильно, она не содержит гноя и может быть слизистой, пенистой, водянистой, содержать остатки пищи. Цвет образцов, как правило, серый или белый. Такая мокрота пригодна только для исследования на микобактерии туберкулеза и легионеллез. Получение образцов мокроты должно предшествовать началу антибактериальной терапии. Однако, в том случае, когда это невозможно, этитропную терапию начинают до проведения микробиологических исследований. Для повышения результативности исследования мокрота должны быть доставлены в бактериологическую лабораторию не позднее 2 часов от момента забора. В лаборатории производится микроскопия мокроты, ее посев осуществляется только в тех случаях, когда полученные образцы удовлетворяют соответствующим требованиям: -более 25 полиморфноядерных лейкоцитов и менее 10 эпителильных клеток в поле зрения при малом увеличении (рекомендации Американского общества инфекционных болезней); -менее 25 эпителиальных клеток в поле зрения при малом увеличении (рекомендации Канадского общества инфекционных болезней). Учитывая низкую чувствительность и специфичность бактериологических и бактериоскопических методов исследования, они проводятся только у госпитализированных больных. В то же время пневмонии, возникшие у больных с иммунодефицитами подлежат обязательной этиологической расшифровке, так как в данном случае выбор антибактериальных препаратов полностью определяется видом возбудителя. Помимо исследования мокроты у госпитализированных больных проводится посев крови. Для увеличения результативности исследований забор крови производится из 2-х разных вен с интервалом в 10 минут и более. Этиологическая диагностика атипичных пневмоний (M. pneumoniae, C. pneumoniae, Legionella spp.) с использованием классических бактериологических методов исследований возможна только в специализированной лаборатории. В клинической практике используются серологические методы: реакции непрямой иммунофлюоресценции (РНИФ), связывания комплемента (РСК), иммуноферментный анализ (ИФА). Однако эти методы не позволяют осуществить раннюю этиологическую диагностику и представляют интерес преимущественно с эпидемиологической точки зрения. Более информативными являются методы определения антигенов L.pneumophila и S.pneumoniae в моче, антигенов микоплазм хламидий в... [стр. 145 ⇒]

При исследовании анализа мочи в случаях гиперэкссудативной диареи нередко выявляются признаки токсической нефропатии, умеренное повышение содержание белка, наличие выщелоченных эритроцитов, эпителия, лейкоцитов. В определении уровня и глубины поражения желудочно-кишечного тракта играет определенную диагностическую роль исследование копрограммы (приложение 3). Уточнение этиологии болезни возможно лишь для ряда бактериальных инфекций, вызванных известными патогенными и условнопатогенными микроорганизмами, которые в общей массе регистрируемых случаев составляют не более трети. В целях обеспечения высокого качества бактериологической диагностики важно соблюдение известных правил: своевременный забор материалов для исследования и соблюдение правил их забора и доставки в лабораторию (в максимально ранние сроки болезни до назначения антибактериальных средств), поиск возбудителя во всех субстратах, где возможно его пребывание в соответствии с патогенезом болезни. Наряду с испражнениями это могут быть рвотные массы, кровь, моча, ликвор, желчь. Грамотная формулировка исследования в направлении врача способствует эффективной диагностике. Так, следует писать “бактериологическое исследование”, а не “бак.посев", что часто встречается. Предполагая клинически определенную группу инфекций, врач должен отражать это в направлении, на какие микроорганизмы требуется бактериологическое исследование, что позволит лаборантам правильно применить нужные питательные среды (например, существенна разница при постановке исследовании на шигеллы, сальмонеллы или иерсинии). Требования сегодняшнего дня определяют необходимость не только точной идентификации полученного микроба, но и его чувствительности к антибактериальным средствам. В этих целях более важно систематическое отслеживание бактериологической службой актуальных для региона штаммов возбудителей и их свойств. Пример формулировки исследования в направлении в лабораторию: бактериологическое исследование кала (крови) на шигеллы, сальмонеллы. При получении положительного результата следует говорить: диагноз подтвержден обнаружением копрокультуры (гемокультуры) возбудителя. 22... [стр. 25 ⇒]

Следует от­ направляют на микробиологическое метить, что в настоящее время этим исследование. Другой вариант — стетребованиям больше других удовле­ рилизованные в том же растворе творяют 7-излучение, этилена оксид, тест-объекты в упакованном виде p-пропиолактон. Их антивирусная направляют в бактериологическую активность хорошо изучена, однако лабораторию, где в боксе их пересудить о ней при заготовке тканей носят на соответствующие микробиопока нельзя из-за отсутствия специ­ логические среды. При газовой стеальных методов исследования, ана­ рилизации из 10 обработанных этилогичных тем, что применяются сей­ лена оксидом трансплантатов 1— 2 час при установлении бактериальной подвергают в боксе исследованиям контаминации биологических транс­ • по изложенным выше правилам. При плантатов. В этом направлении не­ другом варианте из предназначаемых обходимы целенаправленные изыска­ для стерилизации трансплантатов бения с участием вирусологов. рут 20 —30 небольших кусочков, разЧто же касается правил исследо­ мещают их по нестерильным пробирвания тканей на стерильность, то кам, которые закрывают ватно-марвкратце их можно изложить следую­ левыми пробками и стерилизуют вмещим образом. Так, если биологиче­ сте с основными препаратами. После ский материал был получен с соблю­ стерилизации пробирки с тест-объекдением асептики, то взятие проб для тами направляют в бактериологичебактериологического контроля про­ скую лабораторию. Там пробирки с изводят непосредственно при его посевами выращивают при 37°С или заготовке. Для этого от каждого при комнатной температуре в течение препарата берут несколько кусочков 7— 14 сут, после чего при необходии опускают в пробирки с питатель­ мости делают мазки и высевы на ными средами. Можно поступить чашки. Применяют следующие среиначе, т. е. взятые пробы (тест-объ- ды: сахарный бульон, среду Китта — екты) помещают в пустые стерильные Тароцци и тиогликолиевую среду, пробирки или флаконы из-под анти­ позволяющие судить о наличии аэбиотиков, герметично опечатывают, робов и анаэробов. Если бульон после чего отправляют в бактерио­ совершенно прозрачен, то бактериологическую лабораторию, где в ус­ скопия и высевы необязательны. Со ловиях бокса их переносят на те или среды Китта — Тароцци бактериоиные питательные среды. скопию необходимо выполнять во При заготовке тканей с помощью всех случаях без исключения. Бактестерилизующих средств методика риоскопическое исследование служит микробиологических исследований подсобным диагностическим приеимеет некоторые особенности. Так, мом, а жизнеспособность обнаруженесли ткани стерилизуют в жидкой ных в мазках микроорганизмов среде и в общей таре, то пробы на должна быть во всех случаях подстерильность берут с соблюдением тверждена получением в пересевах асептики в момент их извлечения из соответствующих субкультур. В конечном итоге более подробсреды и окончательной упаковки. При нахождении тканей в индивиду­ ные сведения о бактериологическом альной таре их стерильность прове­ контроле различных тест-объектов ряют несколько иначе. Для этого на стерильность изложены в приказе тест-объекты помещают в отдельную М3 СССР № 720 от 1976 г. Остается тару, заливают той же средой, что добавить, что такой контроль в 456... [стр. 454 ⇒]

Экспекторируемая мокрота. Д иагностическая ценность окрашивания получаем ой при глубоком откаш ливаний мокроты по Граму и се бактериологического исследования обсуж дается уже много лет. Оказалось, что наиболее важным при м икробиологическом исследовании мокроты является предварительная цитологическая оценка пригодности материала исследованию, и этот подход стал в последую щ ем рассматриваться как стандартный. Однако существует ряд требований: 1. Забор материала долж ен производиться до начала антибактериального лечения. 2. Н еобходи м качественный контроль за процессом получения материала, его транспортировкой в лабораторию и правильной обработкой. Задержка б о л ее 2-5 ч от момента получен и я материала и до помещ ения его в термостат чревата ош ибочны м и результатами. 3. Ц и тологи ческое исследование необходим о для подтверждения т о го, что в м атериале содержится секрет нижних дыхательны х путей, а количество секрета из верхних ды хательны х путей незначительно. Первоначальны м критерием пригодности получаем ы х образцов мокроты д ля проведения бактериологического исследования считал о с ь наличие >2 5 П Я Л и < 1 0 клеток п лоско клеточного эпителия в п о ле зрения микроскопа при 100-кратном увеличении. За последнее время критерии цитологического исследования претерпели некоторые изменения, и на сегодняшний день м ногие лаборатории считают возможным проведение бактериологического исследования мокроты при наличии <2 5 эп и тели альн ы х клеток в поле зрения. Д л я определен и я M ycob acteria и Legion ella предварительное цитологическое исследование не проводится. 4. М и к р оби ологи ч еск ое исследование долж н о включать в себя окрашивание по Грам у и посев. Программа контроля качества направлен а на вы явления соответствия между результатам и этих и сследований. М н о ги е авторы склоняю тся к тому, что окрашивание мазков мокроты по Граму может давать достаточно точную информацию, несмотря на слабое техническое обеспечение. Е сли лабораторны й материал собран до начала антибактериального лечения, то окраш ивание по Граму и посев мокроты п озволяю т выявить вероятный возбудитель в 60% случаев. При этом в 90% случаев результаты бактериоскопии и посева совпадают. Предш ествую щ ая антибактериальная терапия снижает вероятность вы деления предполагаемого возбудителя на 20-30%. П ри этом вероятность выделения требовательн ы х к услов и ям культивирования бактерий (Streptococcus pneumoniae, Haem ophilus influenzae) становится практически равной нулю , а вы деление в этой ситуации «н еп ри в ередли в ы х» микроорганизмов (грам отриц ательны е бактерии, Staphylococcus aureus) часто ош ибочно трактуется как значимая м икробиологическая «н аходка». П о данным больш инства лабораторий от 10 до 70% материала при ц итологическом исследовании оценивается неправильно. Это объясняется погреш ностями в цитологических критериях и в подготовке м едицинского персонала, который производит забор материала. Е с... [стр. 24 ⇒]

Противопоказания: кровотечение из ЖКТ, ожоги пищевода и желудка, бронхиальная астма, инфаркт миокарда, нарушения мозгового кровообращения. Необходимое оснащение: • толстый желудочный зонд; • жидкое вазелиновое масло; • роторасширитель, языкодержатель, металлический напальчник; • резиновые перчатки, клеёнчатые фартуки; • ведро с чистой водой комнатной температуры, литровая кружка, воронка ёмкостью 1 л, таз для промывных вод. Порядок выполнения процедуры (рис. 8-1): 1. Ввести толстый желудочный зонд до определённой метки (см. выше раздел «Зондирование желудка»). 2. Подсоединить воронку к зонду и опустить её, слегка наклонив, до уровня колен больного, чтобы вылилось содержимое желудка. 3. Налить в воронку 1 л воды, затем медленно поднимать её, пока уровень воды в воронке не достигнет её устья (но не более!). 4. Опустить воронку ниже уровня колен пациента, сливая появившееся содержимое желудка в таз (рис. 8-2; промывные воды поступают в таз по закону сообщающихся сосудов). 5. Повторить процедуру промывания желудка несколько раз, пока промывные воды не станут чистыми. 6. Отсоединить воронку от зонда, осторожно извлечь зонд из желудка пациента. 7. Дать пациенту прополоскать ротовую полость водой, обеспечить ему покой. 8. Поместить зонд с воронкой на 1 ч в ёмкость с дезинфицирующим раствором (3% раствором хлорамина Б). 9. При необходимости отправить первую порцию промывных вод в лабораторию (бактериологическую, токсикологическую и пр.). [стр. 100 ⇒]

Биологический — посев со стерильного материала на питательные среды. Нет роста колоний — материал стерильный, есть — необходима повторная стерилизация. Бактериологический контроль качества стерилизации проводят один раз в 10 дней. Методы бактериологического контроля: • прямой метод - в стерильных условиях осуществляют забор образца материала (салфетка, шарик, шовный материал и т.д.), помешают в стерильную пробирку и отправляют в бактериологическую лабораторию; • непрямой метод (биотест) - пробирку, содержащую известную культуру микроорганизмов помещают в стерилизатор вместе со стерилизуемым материалом и проводят стандартный цикл обработки. После завершения стерилизации пробирку с биокультурой отправляют в бактериологическую лабораторию. Материал из бикса, использованного для биотеста для работы не используют. При отсутствии роста микрофлоры делают заключение об адекватности стерилизации. Недостаток метода заключается в том, что ответ мы получаем только спустя 48 часов после забора материала, а материал считается стерильным после автоклавирования в биксе тоже в течение 48 часов, т.е. материал должен быть использован до получения ответа из бактериологической лаборатории. Метод применяют для оценки качества работы стерилизационного оборудования, персонала и т.д. Основные виды упаковок и сроки сохранения стерильности Вид упаковки Стерилизационные коробки без фильтров (выложенные изнутри стерильной простыней) Решетчатые коробки Двойная мягкая упаковка из бязи Специальные пленчатые упаковки Полиэтиленовая пленка Упаковочная однослойная бумага, скрепленная скрепкой Упаковочная двухслойная бумага... [стр. 48 ⇒]

Бактериологический контроль автоматической моечно-дезинфицирующей, дезинфицирующей или стерилизующей машины проводят после окончания цикла её самодезинфекции. Места забора материала для бактериологического исследования должны быть эпидемиологически обоснованы и указаны в инструкции для персонала бактериологической лаборатории. Контроль качества стерилизации эндоскопов в газовом, плазменном или паровом стерилизаторах проводится химическими и биологическими тестами, разработанными для каждого стерилизующего агента и с кратностью, не менее установленной производителями стерилизаторов. Микробиологический контроль над объектами внешней среды также рекомендуется осуществлять планово, не реже 1 раза в месяц. Объекты контроля: • воздух; • поверхности помещения, оборудования; • ёмкости, используемые в цикле обработки. Лабораторные и инструментальные исследования проводят в лабораториях ЛПУ или лабораториях, лицензированной на данный вид деятельности по договору Защита... [стр. 37 ⇒]

Предисловие Основной задачей санитарной микробиологии является оптимизация клинико-диагностических микробиологических исследований, направленных на выявление в исследуемом материале этиологического агента, вызвавшего инфекционное заболевание. В связи с этим при изучении санитарной микробиологии особое внимание уделяется: – факторам патогенности микроорганизма, – соблюдению оптимальных сроков исследования вирулентности микроорганизмов, – четкой формулировке целей и задач на каждом из этапов лабораторного исследования в рамках биологического метода, – использованию адекватных и экономически рентабельных методов диагностики, – правильной трактовке полученных результатов. Правила работы и поведения в бактериологической лаборатории • В помещение бактериологической лаборатории нельзя входить без специальной одежды – халата и белой шапочки. • Нельзя вносить в лабораторию посторонние вещи. • В помещении бактериологической лаборатории категорически запрещается курить, принимать пищу, хранить продукты питания. • Весь материал, поступающий в бактериологическую лабораторию, должен рассматриваться как инфицированный. Переливание жидкостей, содержащих патогенные микробы, производят над сосудом, наполненным дезинфицирующим раствором. • Если посуда, содержащая заразный материал, разбилась и взвесь микробов попала на платье, участки тела, предметы, рабочее место, надо немедленно сообщить преподавателю и принять меры по их обезвреживанию. • При исследовании инфицированного материала и работе с патогенными культурами микробов необходимо строго соблюдать общепринятые в бактериологической практике технические приемы, исключающие возможность соприкосновения рук с заразным материалом. • Зараженный материал и использованные культуры подлежат обязательному уничтожению по возможности в тот же день. Инструменты сразу после употребления дезинфицируют, как и поверхность рабочего места. • При выполнении бактериологических работ нужно строго следить за чистотой рук; по окончании работы с заразным материалом их дезинфицируют. Рабочее место в конце дня приводят в порядок и тщательно дезинфицируют 1% раствором хлорамина или 70 % этиловым спиртом. [стр. 3 ⇒]

Наконец, бывают ситуации, в которых сразу можно предполагать наличие смешанной микрофлоры. Так, при перитоните в брюшной полости будут грамотрицательные энтеробактерии и грамположительные энтерококки. Естественно, вместе с анаэробами. Бывает, что попытки угадывать бесполезны. Опять рассмотрим деструктивную пневмонию, но уже у лиц старшего возраста в ослабленном состоянии. Например, поступил пожилой алкоголик. Здесь наряду со стафилококками распространены грамотрицательные клебсиеллы. Вернемся к безуспешной терапии цефалоспоринами третьей генерации (Клафоран, Роцефин, Дардум). После их назначения могут остаться или резистентные грамотрицательные бактерии (вроде синегнойной палочки или серрации), или оксациллинрезистентные стафилококки. Кто именно - без исследования сказать невозможно. Собственно методика окраски мазка по Граму проста, ее осваивают студенты мединститута на третьем курсе. Любая клиническая лаборатория (если ее заставить) должна выдавать экстренный ответ в течение одного - двух часов. Однако такой анализ не панацея. Кровь красить бесполезно, слишком низкая концентрация возбудителей. Даже при использовании специализированных автоматических «кровяных» анализаторов иногда требуется до 4 - 5 дней, пока патогены подрастут, а при классической методике ответ доступен вообще на 10-е сутки. В той же мокроте при «домашней» пневмонии иногда выделяется до 7 возбудителей, как «синеньких», так и «красненьких», большей частью это нормальная микрофлора зева. Пойди разгляди за ними того, кто вызвал заболевание. Поэтому некоторые бактериологические лаборатории сначала делают посев пробы клинического материала в чашки Петри на сутки, и только на следующий день решают, грамположительный или грамотрицательный микроб повинен в развитии болезни. А развернутый ответ получается лишь на 3 - 4 сутки. Иногда дольше. Что и когда красить по Граму. Остановимся еще на одном вопросе, который внешне выглядит примитивным из-за очевидности ответа: патогенов какой именно локализации окрашиваем (не оцениваем, а именно красим) по Граму? Ну как же, из очага инфекции. Однако на практике все сложнее. У септических больных очаг инфекции часто не удается локализовать. Про мокроту уже сказано — собственно красить мазок либо неэффективно, либо бывает неэффективно. Здесь надо делать посев. Намного проще дело обстоит с раневым отделяемым в гнойной хирургии, но там и без лаборатории все ясно: в подавляющем большинстве случаев — стафилококк. Когда же надо вообще проводить реальное исследование патогенов по Граму? В основном это требуется при длительной, но неэффективной антибиотикотерапии. Тогда необходимо окрашивать мазки со всех доступных слизистых — зев, прямая кишка. Или, если есть хорошая бактериологическая лаборатория, то выращивать микрофлору по полноценной методике все равно с тех же слизистых. Хотя при этом Вы можете услышать, что совершаете грубую микробиологическую ошибку, поскольку путаете колонизацию с инфицированием. То есть микробы просто живут на слизистых, и вовсе не обязательно вызывают заболевание. Давайте разбираться. Представим больного, который поступил в реанимацию после двух недель лечения в другой больнице. Состояние тяжелое, вроде бы из-за инфекционного процесса. Что посоветуют микробиологи? Провести идентификацию возбудителя и определить его чувствительность (допустим, в больнице есть хорошая бактериологическая лаборатория)66... [стр. 66 ⇒]

Описанные формы могут наблюдаться при микроскопии в результате "чрезмерной" подготовки пациентки к посещению врача или же после проведения интенсивной химиотерапии антибактериальными препаратами широкого спектра действия (Цефалоспорины, макролиды и т.п.). 2 степень – субкомпенсированный, характеризующийся количественным снижением лактобактерий, соизмеримым с возрастанием количества сопутствующей грамвариабельной полиморфной бактериальной флоры, и появлением в поле зрения единичных (1-5) "ключевых" клеток при относительно умеренном лейкоцитозе (15-25 в поле зрения). "Ключевые" клетки могут быть представлены как покрытыми бактериальной флорой снаружи эпителиоцитами, так и содержащими бактерии внутриклеточно ввиду неспецифического осуществления эпителиальными клетками функций фагоцитоза. 3 степень – декомпенсированный, являющийся клинически выраженным в соответствии с симптоматикой БВ и микроскопически характеризующийся полным отсутствием лактобактерий, когда все поле зрения заполнено "ключевыми" клетками. Бактериальная флора при этом может быть представлена самыми различными, за отсутствием лактобактерий, микроорганизмами как в монокультуре, так и в различных морфо- и видовых сочетаниях [15]. Одним из методов лабораторной диагностики, который позволяет в полной мере оценить качественные и количественные характеристики микрофлоры влагалища является бактериологическое исследование. C развитием этого метода изменялось и представление о составе микрофлоры влагалища. Усовершенствование бактериологического метода диагностики – улучшение качества питательных сред, методов культивирования, различных техник выделения и идентификации микроорганизмов способствовали изменению представлений о критериях нормы. Первоначально было установлено, что наряду с лактобактериями в составе нормальной микрофлоры могут быть и условно-патогенные микроорганизмы (стафилококки, стрептококки, некоторые грамотрицательные бактерии) [13, 14]. Внедрение с начала 70-х годов техники анаэробного культивирования привнесло новые существенные коррективы в понятие "нормальная" вагинальная микрофлора. По мере совершенствования анаэробной техники и идентификации строгих анаэробов заметно расширился спектр микроорганизмов, входящих в состав нормальной вагинальной микрофлоры [16, 17]. Однако, бактериологический метод исследования не универсален, пределы его возможностей весьма ограничены и зачастую зависят от ряда субъективных факторов, таких как оснащенность бактериологической лаборатории, качество используемых для выделения микроорганизмов питательных сред, уровень подготовки бактериологов и т.д. Поэтому результаты исследований различных авторов значительно варьируют и в настоящее время пока еще не определены четкие критерии "нормофлоры" влагалища, пограничных и патологических состояний. А это, в свою очередь, создает определенные трудности в постановке диагноза, прогнозировании тяжести течения патологического процесса и возможности его осложнений, а также в назначении адекватной этиотропной терапии. Бактериологический метод Классическое бактериологическое исследование отделяемого из влагалища позволяет оценить как качественный, так и количественный состав бактериальной микрофлоры. Дифференциация и идентификация микроорганизмов – определение родовой, видовой и типовой принадлежности микроорганизмов является наиболее трудоемким и ответственным этапом бактериологического исследования. Он осуществляется на основании изучения целого комплекса свойств: морфологических, тинкториальных, культуральных, ферментативных и антигенных. При идентификации микроорганизмов необходимо работать только с чистой культурой, поскольку присутствие посторонних микроорганизмов может исказить результаты исследования и послужить поводом для ошибочного заключения. Широкий спектр микрорганизмов, играющих роль в формировании микробиоценоза влагалища, а также в возникновении инфекционного процесса, требует изучения их ферментативной активности путем постановки большого количества различных биохимических реакций, позволяющих по сочетанию полученных результатов в комплексе с другими данными определить вид микроорганизма. Этот раздел работы наиболее трудоемкий, проводится в несколько этапов, требует приготовления большого количества питательных сред, дефицитных реактивов, посуды и т.д., что делает этот метод исследования достаточно дорогостоящим. В связи с этим, в настоящее время для идентификации микроорганизмов используются микрометоды – коммерческие микротест-системы или слайды для биохимической идентификации микроорганизмов различных групп. Важным фактором, значительно влияющим на успех бактериологической диагностики БВ, является корректный способ взятия и транспортировки исследуемого материала. Так, взятие материала должно всегда осуществляться до начала лечения биотерапевтическими или антибактериальными препаратами или не ранее чем через 10 дней после окончания их приема, а также до начала проведения других местных терапевтических вмешательств. Накануне взятия материала пациентка не должна иметь половую связь. Для предотвращения гибели бактерий, чувствительных к различным факторам окружающей среды, и во избежании размножения в исследуемом материале бактерийкомменсалов транспротировка взятого материала в лабораторию должна осуществляться в максимально короткие сроки и в специальных транспортных средах. В настоящее время бактериологи располагают большим арсеналом коммерческих универсальных транспортных сред, которые способны сохранять в жизнеспособном состоянии весь спектр культивируемых микроорганизмов. В зависимости от цели исследования, которая определяется в необходимости проведения точной количественной оценки микрофлоры или возможностью ограничиться ориентировочным (полуколичественным) методом, вагинальное отделяемое высевается на питательные среды двумя методами: 1.взятие вагинального отделяемого производится с помощью калиброванной петли (диаметр 3 мм) или ложечки Фолькмана, затем материал погружается в 1 мл жидкой транспортной среды, далее из материала готовят серийные разведения из расчета 10:1(объем/вес) и затем по 0,1 мл высевают на различные селективные питательные среды;... [стр. 13 ⇒]

Правила работы в бактериологической лаборатории 1. Все сотрудники должны работать в медицинских халатах, шапочках и сменной обуви. В необходимых случаях работающие надевают на лицо маску из марли. Работа с особо опасными микроорганизмами регламентируется специальной инструкцией и проводится в режимных лабораториях. 2. В помещении бактериологической лаборатории категорически запрещается курить, принимать пищу, хранить продукты питания. 3. Рабочее место должно содержаться в образцовом порядке. Личные вещи сотрудников следует хранить в специально отведенном для этого месте. 4. Весь материал, поступающий в бактериологическую лабораторию, должен рассматриваться как инфицированный. Его регистрируют в специальном журнале и маркируют. 5. При распаковке присланного заразного материала необходимо соблюдать осторожность: емкости с материалом протирают дезинфицирующим раствором снаружи и ставят на подносы или кюветы. 6. При попадании инфицированного материала на руки, стол и предметы на рабочем месте их необходимо немедленно обработать дезинфицирующим раствором (руки — антисептиком). 7. По окончании работы руки следует тщательно вымыть, а при необходимости обработать антисептиком. 8. Культуры после работы обезвреживают или (при необходимости) сохраняют в холодильнике. Материал, требующий продолжения исследования, ставят в термостат. При хранении патогенных культур их регистрируют в специальном журнале. Указывают количество культур, даты их поступления, пересева и уничтожения. 9. Рабочее место в конце дня приводят в порядок и тщательно дезинфицируют, а перед работой облучают бактерицидными лампами. Еженедельно обрабатывают стены, полы, инвентарь. ТЕОРЕТИЧЕСКАЯ СПРАВКА Морфология микроорганизмов Микроорганизмы объединены в три царства: Eucaryotae (простейшие и грибы), Procaryotae (бактерии), Vira (вирусы). Простейшие — одноклеточные микроорганизмы, лишены дифференцированной клеточной стенки. Цитоплазма и ядро имеют сложную организацию и соответствуют строению эукариотической клетки. Передвигаются простейшие посредством жгутиков, ресничек и псевдоподий. В неблагоприятных условиях образуют цисты. Представители патогенных простейших на уровне рода: Entamoeba, Lamblia, Trichomonas, Leishmania, Toxoplasma, Plasmodium и др. Грибы относятся к эукариотам. Подавляющее большинство грибов — аэробы. Грибы гаплоидны (кроме грибов рода Candida), способны к половому размножению. Вегетативно грибы распространяются с помощью гиф или образуют колонии из одиночных клеток (дрожжевидный рост). Гифы — вегетативные нитчатые органы, которые, переплетаясь, образуют мицелий. Репродукция грибов осуществляется спорами (половое размножение) или конидиями (бесполое размножение). Грибные клетки сходны между собой набором основных структур, характерных для эукариот: ядро, митохондрии, рибосомы, эндоплазматический ретикулум, аппарат Гольджи. Клеточная стенка состоит из микрофибрилл, образованных из хитина, глюканов и маннанов. В мембране содержится большое количество эргостерола. Грибы, имеющие медицинское значение, могут вызывать у человека микозы, микотоксикозы и микогенные аллергии. Представители патогенных грибов — роды Coccidioides, Histoplasma, Cryptococcus, Epidermophyton и др. Условно-патогенные грибы — из родов Aspergillus, Candida, Pneumocystis и др. Бактерии, по классификации Берджи, делятся на четыре отдела. 1. Бактерии с тонкой клеточной стенкой — грамотрицательные (кокки, палочки, извитые, риккетсий, хламидии). 2. Бактерии с толстой клеточной стенкой — грамположительные (кокки, палочки, актиномицеты). 3. Бактерии без клеточной стенки (микоплазмы). 4. Архебактерии. [стр. 1 ⇒]

Иногда эти микроорганизмы имеют морфологические характеристики, присущие определенным бактериальным видам. Газ в тканях относится к признакам, в высшей степени подозрительным на инфекцию анаэробами, ко не имеющим диагностического значения. Результаты бактериологических исследований проб из заведомо инфицированных очагов, в которых не выявляется рост бактерий или обнаруживаются только стептококки или^же один вид аэробов, например кишечная палочка, а в мазках из того же материала, окрашенных по Граму, обнаруживают смешанную микрофлору, означают, что анаэробные микроорганизмы не растут из-за неадекватных условий транспортировки или метода посева. Аналогичным образом неэффективность противобактериальных препаратов, не обладающих активностью в отношении анаэробов, например аминогликозидов или иногда пенициллина, цефалоспоринов или тетрациклинов, позволяет предположить возможность анаэробной инфекции. В диагностике анаэробной инфекции различают три решающих условия: 1) получение соответствующих проб; 2) их быстрая доставка в микробиологическую лабораторию предпочтительно в среде, предназначенной для транспортировки анаэробов; 3) соответствующая обработка проб в лаборатории. Забор проб для исследования производят с особой тщательностью непосредственно из участка поражения с максимальным предохранением от загрязнения нормальной флорой. При подозрении на загрязнение пробы нормальной флорой организма ее нельзя отправлять для исследования в бактериологическую лабораторию. К числу проб, не пригодных для бактериологического исследования на предмет выявления анаэробной микрофлоры, относятся: 1) мокрота, полученная при самопроизвольном выделении, или отделяемое из носа или трахеи; 2) пробы, полученные при бронхоскопии; 3) пробы, полученные непосредственно из влагалищных сводов; 4) моча, полученная при свободном мочеиспускании; 5) фекалии. К числу проб, которые могут быть исследованы методом посева, относятся кровь, плевральная жидкость, транстрахеальные аспираты, гной, полученный методом прямой аспирации из полости абсцесса, жидкость, полученная при центезе, аспират, полученный при надлобковой пункции мочевого пузыря, спинномозговая жидкость и пунктаты легких. В связи с тем что даже кратковременная экспозиция с кислородом может вызвать гибель этих микроорганизмов и помешать их выделению в лабораторных условиях, из полостей абсцессов, из которых с помощью шприца забирают содержимое для исследования, должен быть удален воздух, а иглу следует закрыть стерильным резиновым колпачком. Полученную пробу можно поместить в закупоренные контейнеры с редуцированной питательной средой или немедленно передать в герметически закрытом шприце в лабораторию для непосредственного бактериологического исследования. Забор пробы методом мазков не следует практиковать. Однако, если необходимо получить мазок, пробу помещают в редуцированную полужидкую среду для доставки в лабораторию. Важно помнить, что запоздание с транспортировкой может привести к неудачам в выделении анаэробов из-за экспозиции с кислородом или обильному росту факультативных микроорганизмов, которые могут подавить рост или полностью уничтожить содержащиеся в пробе анаэробы. При подозрении на анаэробную инфекцию из всех проб готовят мазки, окрашенные по Граму, и исследуют с целью определения микроорганизмов с типичной для анаэробов морфологией. Это важно для микроорганизмов, выявляющихся при окраске по Граму, но не высевающихся. Если при исследовании гноя его считают «стерильным» или если при окраске по Граму выявляют микроорганизмы, не растущие на питательной среде, следует заподозрить анаэробную инфекцию и нарушение условий транспортировки или метода исследования. Лечение. Эффективность лечения при анаэробных инфекциях достигается при сочетании соответствующих антибиотиков, хирургической резекции и дренирования. Несмотря на то что само по себе хирургическое лечение может оказывать решающее воздействие, только оно может быть недостаточным. Дренирование полостей абсцесса следует производить незамедлительно, как только локализуется очаг или появляется флюктуация. Перфорации следует немедленно закрыть, нежизнеспособные ткани или инородные тела удалить, закрытые пространства дренируют, участки сдавления тканей подвергают декомпрессии и создают условия для адекватного кровоснабжения. Одновременно следует использовать соответствующие антибиотики, так как анаэробный сепсис может продолжаться и после операции, проявляясь интермиттирующей симптоматикой и скрытым прогрессированием процесса. Часто возникает необходимость начать лечение антибиотиками на основании только подозрения на анаэробную инфекцию, не дожидаясь результатов бактериологического... [стр. 1033 ⇒]

Единственным наиболее часто выделяемым микроорганизмом служит В. fragilis. Входные ворота инфекции могут быть установлены по идентификации микроорганизма и определению мест его обитания, из которых он попадает в кровоток. Например, бактериемия, вызванная смешанной анаэробной микрофлорой, в том числе В. fragilis, обычно развивается при патологии толстого кишечника с повреждением его слизистой оболочки (злокачественные новообразования, дивертикулит или другие воспалительные процессы). Первоначальные проявления заболевания определяются местом внедрения инфекции и ответной реакцией организма. Однако при попадании микроорганизмов в кровоток у больного может развиться чрезвычайно тяжелое состояние с ознобами и гектической температурой тела, достигающей 40,5°С. Клиническая картина может ничем не отличаться от картины аэробного сепсиса, вызванного грамотрицательными бактериями. Однако известны и другие осложнения анаэробной бактериемии, например септический тромбофлебит и септический шок, частота которых при анаэробной бактериемии невысока. При анаэробной бактериемии часто наступает смерть, поэтому необходимы ее быстрые диагностика и начало соответствующего лечения. Следует также идентифицировать источник бактериемии. Выбор антибиотика зависит от результатов идентификации микроорганизма. Эндокардит (см. гл. 188). Эндокардит, обусловленный анаэробами, встречается редко. Однако анаэробные стрептококки, которые нередко классифицируются неправильно, вызывают это заболевание значительно чаще, чем это считается, хотя общая его частота неизвестна. Грамотрицательные анаэробы редко служат причиной эндокардита. Диагностика. Из-за трудностей, связанных с выделением анаэробных бактерий и необходимым для этого периодом, диагноз анаэробных инфекций нередко должен основываться на предположении. Инфекции, вызванные этими, не образующими спор анаэробными бактериями, отличаются особенностями, в значительной мере облегчающими диагностику. Диагноз анаэробной инфекции облегчается при выявлении определенных клинических признаков, в частности неваскуляризованных некротических тканей со сниженным окислительно-восстановительным потенциалом. При идентификации возбудителя в очагах воспаления, отдаленных от слизистых поверхностей, в норме заселенных анаэробной микрофлорой (желудочно-кишечный тракт, женские половые пути или ротоглотка), анаэробы следует считать потенциальным этиологическим агентом. При анаэробных инфекциях часто появляется неприятный запах, так как в процессе пролиферации в некротических тканях продуцируются определенные органические кислоты. Несмотря на патогномоничность запаха для анаэробной инфекции, его отсутствие не исключает того, что анаэробы служат причиной заболевания. В 50% случаев при анаэробной инфекции характерный неприятный запах отсутствует. В связи с тем что анаэробы часто ассоциируются с другими бактериями, вызывая смешанную или синергическую инфекцию, в окрашенном по Граму экссудате часто выявляют многочисленные плеоморфные кокки и подозрительные на анаэробы бактерии. Иногда эти микроорганизмы имеют морфологические характеристики, присущие определенным бактериальным видам. Газ в тканях относится к признакам, в высшей степени подозрительным на инфекцию анаэробами, ко не имеющим диагностического значения. Результаты бактериологических исследований проб из заведомо инфицированных очагов, в которых не выявляется рост бактерий или обнаруживаются только стептококки или^же один вид аэробов, например кишечная палочка, а в мазках из того же материала, окрашенных по Граму, обнаруживают смешанную микрофлору, означают, что анаэробные микроорганизмы не растут из-за неадекватных условий транспортировки или метода посева. Аналогичным образом неэффективность противобактериальных препаратов, не обладающих активностью в отношении анаэробов, например аминогликозидов или иногда пенициллина, цефалоспоринов или тетрациклинов, позволяет предположить возможность анаэробной инфекции. В диагностике анаэробной инфекции различают три решающих условия: 1) получение соответствующих проб; 2) их быстрая доставка в микробиологическую лабораторию предпочтительно в среде, предназначенной для транспортировки анаэробов; 3) соответствующая обработка проб в лаборатории. Забор проб для исследования производят с особой тщательностью непосредственно из участка поражения с максимальным предохранением от загрязнения нормальной флорой. При подозрении на загрязнение пробы нормальной флорой организма ее нельзя отправлять для исследования в бактериологическую лабораторию. К числу проб, не пригодных для бактериологического... [стр. 1015 ⇒]

Перед забором материала для нейтрализации желудочного содержимого пациенту дают выпить 100 - 150 мл раствора питьевой соды (1 чайная ложка питьевой соды на 1 стакан воды). Раствор приготавливается на стерильной дистиллированной воде. После этого вводят желудочный зонд и собирают содержимое желудка в стерильный флакон. Материал немедленно доставляют в лабораторию и подвергают обработке, чтобы исключить повреждающее влияние на возбудителя содержащихся в материале желудочных ферментов. Особенно результативен метод получения промывных вод желудка в сочетании с предварительной аэрозольной ингаляцией. Промывные воды желудка следует забирать через 30 мин. после аэрозольной ингаляции. Такая комбинация двух указанных методов позволяет получать значительно больший процент положительных результатов, чем каждый из них в отдельности. Этот метод получения диагностического материала может оказаться полезным также у пациентов с подавленным кашлевым рефлексом, у которых не удается получить материал даже при провоцирующих ингаляциях. При внелегочных формах заболевания микобактерии могут поражать практически любой орган, поэтому для исследования пригоден самый разнообразный материал: различные тканевые жидкости (спинномозговая, плевральная, перикардиальная, синовиальная, асцитическая, кровь, гной), пунктаты костного мозга, резецированные ткани того или иного органа, полученные при биопсиях или оперативных вмешательствах, гнойно-некротические массы, грануляции, соскобы синовиальных оболочек, лимфатические узлы или пунктаты их содержимого. Специальных навыков, дополнительного оборудования для забора и исследования диагностического материала не требуется. Методика должна использоваться во всех лечебнопрофилактических учреждениях, имеющих в своем составе клиническую лабораторию, однако при возможности следует организовать доставку материала в бактериологическую лабораторию или направить больного в диспансерное отделение областного противотуберкулезного диспансера для консультации специалиста по внелегочному туберкулезу. При внелегочных формах процесса исследуется как асептически полученный материал, свободный от загрязняющей сопутствующей микрофлоры, так и заведомо загрязненный материал из открытых очагов поражения, в отношении которого заранее известно, что он контаминирован сопутствующей микробной флорой или собран без соблюдения правил асептики. Асептически собранный тканевый материал чаще всего состоит из полученной при биопсиях или оперативных вмешательствах резецированной ткани того или иного органа, гнойнонекротических масс, грануляций, соскобов синовиальных оболочек, лимфатических узлов или пунктатов их содержимого. Материал помещается в стерильный флакон без консервантов и немедленно доставляется в лабораторию. Если материал не может быть немедленно доставлен в лабораторию, во избежание высыхания к нему добавляется небольшое количество стерильного изотонического раствора, и он помещается в холодильник при 4 - 10 °С или во флакон с сухим льдом. Заведомо загрязненные материалы. К этой категории относится большинство ниже перечисленных материалов, а также основной и наиболее доступный при мочеполовом туберкулезе материал - моча. Моча (средняя часть утренней порции или вся утренняя порция) собирается в стерильную посуду после тщательного туалета наружных половых органов. Анализ мочи на микобактерии должен предусматривать обязательное троекратное исследование. В лаборатории мочу центрифугируют, используя метод накопления осадка. Особенностью существования МБТ в жидкостях является способность их долгое время находиться во взвешенном состоянии. В связи с этим рекомендуется производить центрифугирование при 3000 g всего материала, а не его донной фракции, получаемой после отстаивания в естественных условиях. Сбор суточной мочи для бактериологического исследования не практикуется. Это объясняется тем, что при накоплении мочи в течение суток невозможно сохранить ее стерильность и т.д. Менструальная кровь. Исследование менструальной крови требует особого методического подхода. Наличие в этом материале большого количества протеолитических, фибринолитических и других ферментов обусловливает необходимость незамедлительной доставки материала в лабораторию и тщательной его обработки, так как менструальная кровь, с одной стороны, <...> материалом для развития вторичной флоры, а с другой благодаря обилию ферментов, неблагоприятно влияет на жизнеспособность микобактерий. Менструальную кровь следует собирать не тампоном, а вакуумным отсосом или колпачком Кафки. Исследуют ее так же, как кровь или другие материалы с примесью крови. Если у больного заподозрена внелегочная форма туберкулеза, помимо других видов диагностического материала желательно также исследовать и мокроту, так как это существенно повышает частоту выявления сочетанных легочных и внелегочных форм туберкулеза. Режимы, кратность, методика сбора мокроты. [стр. 10 ⇒]

Методы отбора других проб для бактериологического контроля. Пробы отбирают специалисты ЦГСЭН. Кратность обследования с отбором проб – не менее 1 раза в квартал. Кроме воздуха, объектами бактериологического контроля являются дистиллированная вода; инъекционные растворы до и после стерилизации; глазные капли после стерилизации; глазные капли, приготовленные в асептических условиях на стерильных основах; сухие лекарственные вещества, используемые для приготовления инъекционных растворов; аптечная посуда, пробки, прокладки, прочие вспомогательные материалы; инвентарь, оборудование, руки и санитарная одежда персонала. Пробы дистиллированной воды, используемой для приготовления лекарственных средств (кроме лекарств для инъекций и глазных капель) отбирают в стерильные бутылки в количестве 300 см3 , с последующим закрытием ватными пробками и бумажными колпачками. Пробы отбирают из бюретки, конец которой предварительно обжигают ватой, смоченной спиртом. При неудовлетворительных результатах анализа отбор проб проводят из приемника. Оценка результатов бактериологического исследования проводится в соответствии с требованиями ГОСТ 2874–82 “Вода питьевая…”. Пробы дистиллированной воды, используемой для приготовления инъекционных растворов и глазных капель, отбирают в стерильные флаконы в количестве 15–20 см3 непосредственно из емкостей, в которых осуществляется стерилизация. Инъекционные растворы (до стерилизации) отбирают во время их приготовления, но не позднее полутора часов и доставляют в лабораторию в тех же флаконах, в которых они будут подвергнуты стерилизации. Инъекционные растворы, глазные капли после стерилизации и приготовления асептическим способом доставляют в аптечной упаковке. Глазные капли из торгового зала аптек доставляют непосредственно во флаконах, отпускаемых населению. Целесообразно отбирать глазные капли 3–4 наименований как со стола ассистента, так и прилавка. Отбор сухих лекарственных веществ проводят стерильными ложками в стерильную посуду лаборатории в количестве 30–50 г. В случае, если вещество таблетированное, то отбирают фламбированным пинцетом в стерильную посуду лаборатории в количестве 30–50 г. [стр. 59 ⇒]

Стерильная пробирка с пробкой и пропущенным через пробку стержнем с ватным тампоном на конце (готовит бактериологическая лаборатория). 3. Направление в бактериологическую лабораторию. 4. Штатив. Техника выполнения: 1 .Осмотреть полость рта, обратив внимание на язык, миндалины, зев, для определения места взятия отделяемого на исследование. 2.Осторожно держа за пробку, извлечь стержень из пробирки, не касаясь наружных её стенок и окружающих предметов, пробирку поставить в штатив. 3.Взять шпатель 1, 2, 3 пальцами левой руки. Попросить больного открыть рот, прижать шпателем язык, ввести правой рукой в полость рта стержнем с ватным тампоном и снять отделяемое с определённого места (дужки, нёбные миндалины, задняя стенка глотки – мазки берут на границе поражённого участка и здоровой слизистой). 4.Осторожно и быстро извлечь тампон из полости рта и, не касаясь наружных стенок пробирки и окружающих предметов опустить его а пробирку. 5. Указать в направлении время взятия отделяемого. 6. Пробирку с направлением доставить в бактериологическую лабораторию не позднее 2 часов с момента забора материала. 7.При получении результата исследования из лаборатории следует сразу же подклеить его в историю болезни. Мазок из носа Цель. Определение микрофлоры носа. Показания. Инфекционные заболевания верхних дыхательных путей. Оснащение: 1. Стерильный шпатель. 2. Стерильная пробирка с пробкой и пропущенным через пробку стержнем с ватным тампоном на конце, промаркированная «Н» (готовит бактериологическая лаборатория). 3. Направление в бактериологическую лабораторию. 4. Штатив. Техника выполнения: 1 .Усаживают или укладывают пациента, просят слегка запрокинуть голову. 2.Левой рукой берут из штатива пробирку, а правой извлекают стержень с тампоном (не касаясь тампоном окружающих предметов – аккуратно). 3.Пробирку ставят в штатив. [стр. 161 ⇒]

Цель. Определение бактериурии. Показания: Заболевания почек. Противопоказания: Травмы уретры, мочевого пузыря. Оснащение: Оснащение готовится в зависимости от используемой технологии. I. Получение мочи с помощью катетеризации Оснащение: 1. Набор для подмывания 2. Набор для катетеризации 3. Стерильная ёмкость для мочи с направлением в бактериологическую лабораторию. Техника выполнения: Подмыть пациента, убрать судно. Произвести катетеризацию мочевого пузыря. Выпустить свободный конец катетера в стерильную ёмкость, не касаясь её краёв, набрать 20-30 мл мочи. Опустить остатки мочи в судно. Закончить катетеризацию. II. Получение мочи без катетеризации Оснащение: 1.Набор для подмывания 2.Стерильная ёмкость для мочи с направлением в бактериологическую лабораторию. Техника выполнения: 1.Подмыть пациентку теплым дезинфицирующим (раствор фурациллина 1:5000), убрать судно. 2.Попросить пациентку помочиться непрерывно (не задерживая мочеиспускание) сначала в унитаз, затем 20-30 мл в стерильную ёмкость, а остатки мочи – опять в унитаз. 3.Набрав 20-30 мл мочи отправить в бактериологическую лабораторию. Примечания. 1.Стерильную посуду для мочи необходимо взять в бактериологической лаборатории. 2.Отправить мочу в лабораторию не позднее чем через 2 часа после её взятия. 3.При получении результата исследования подклеить его в медицинскую карту стационарного больного. 4.Исследование назначается до приёма антибактериальных средств, уросептиков и форсированного диуреза при нормальном питьевом режиме. 2. Собирается средняя порция мочи после тщательного туалета половых органов с использованием антисептиков, просушивания промежности. 3. Мочу как можно быстрее доставляют в лаборатории. Использование диагностических тест-полосок для экспресс217... [стр. 217 ⇒]

4. неонатологический стационар: отделения новорожденных акушерского физиологического и акушерского обсервационного отделений; отделение реанимации и интенсивной терапии для новорожденных с экспресс-лабораторией (количество реанимационных коек определяется из расчета 4 койки на 1000 родов в территориях обслуживания <*>); -------------------------------<*> Настоящее положение не распространяется на медицинские организации частной системы здравоохранения. отделение патологии новорожденных и недоношенных детей (II этап выхаживания); отделение хирургии новорожденных; дистанционный консультативный центр с выездными анестезиолого-реанимационными неонатальными бригадами; централизованный молочный блок; 13.5. гинекологическое отделение с операционными; 13.6. клинико-диагностическое отделение: клинико-диагностическая лаборатория; бактериологическая лаборатория; лаборатория молекулярной диагностики (при наличии потребности); 13.7. отделение лучевой и магнитно-резонансной диагностики; 13.8. организационно-методический отдел; 13.9. административно-хозяйственное подразделение со вспомогательными службами: администрация; бухгалтерия; отдел кадров; отдел снабжения; экономическая служба; технические службы; аптека; централизованное стерилизационное отделение; пищеблок; прачечная; дезинфекционное отделение; гараж. 14. В структуре Федерального перинатального центра дополнительно могут предусматриваться: симуляционно-тренинговый центр; отдел информационных технологий; отделение банка крови. [стр. 179 ⇒]

1. УЧЕБНО-ТЕХНОЛОГИЧЕСКАЯ ПРАКТИКА ПО МИКРОБИОЛОГИИ И ВИРУСОЛОГИИ 1 УЧЕБНЫЙ ЭЛЕМЕНТ. ОЗНАКОМЛЕНИЕ С ПОМЕЩЕНИЕМ И ОБОРУДОВАНИЕМ ВЕТЕРИНАРНОЙ ЛАБОРАТОРИИ. ТЕХНИКА БЕЗОПАСНОСТИ. ДОКУМЕНТАЦИЯ. МИКРОБИОЛОГИЯ И МИКОЛОГИЯ ЦЕЛЬ ЗАНЯТИЯ: Ознакомиться с организацией и оборудованием в бактериологической лаборатории. Ознакомиться с техникой безопасности и личной профилактикой. Оформлением документов. Оборудование и материалы: помещение бактериологической лаборатории, подготовленное в соответствии с установленными правилами и нормами, световые и люминесцентный микроскопы, центрифуги, журнал регистрации студентов, получивших инструктаж по технике безопасности при работе в бактериологической лаборатории, документация лаборатории. Издание 1 страница 6 из 28... [стр. 6 ⇒]

Примерный план занятия (2 ч) 1. Объяснение преподавателя. 2. Запись в тетради требований при работе с бактериологическим материалом и основных правил выполнения этих требований. 3. Роспись в журнале по технике безопасности. 4. Демонстрация: а) лаборатории и ее основного оборудования; б) организации рабочего места в боксе при работе с бактериями. 5. Самостоятельная работа студентов. Методические указания Занятие можно организовать следующим образом. После объяснения преподавателя и демонстрации студенты должны подготовить рабочее место для работы с бактериологическим материалом. Отрабатывают приемы посевов микроорганизмов на различные питательные среды, подготовку и окраску мазков отпечатков для микроскопического исследования. Для ознакомления с документацией лаборатории можно использовать ветеринарное законодательство, инструкции о правилах работы в лабораториях. В ходе самостоятельной работы студентов необходимо 1. Ознакомиться с бактериологической лабораторией и ее основным оборудованием. 2. Изучить правила работы с бактериологическим материалом. Вопросы домашнего задания 1. Назначение, структура ветеринарных лабораторий и их оборудование и аппаратура. 2. Какие правила по технике безопасности необходимо соблюдать при работе в лаборатории. ВИРУСОЛОГИЯ И БИОТЕХНОЛОГИЯ ЦЕЛЬ ЗАНЯТИЯ: ознакомиться с планировкой и оборудованием вирусологической лаборатории, ее документацией, правилами и техникой безопасности при работе с вируссодержащим материалом. Оборудование и материалы: помещение вирусологической лаборатории, подготовленное в соответствии с установленными правилами и нормами, электронный и люминесцентный микроскопы, центрифуги, журнал регистрации студентов, получивших инструктаж по технике безопасности при работе в вирусологической лаборатории, документация лаборатории. Примерный план занятия (2 ч) 1. Объяснение преподавателя. 2. Запись в тетради требований при работе с вирусным материалом и основных правил выполнения этих требований. 3. Роспись в журнале по технике безопасности. 4. Демонстрация: а) лаборатории и ее основного оборудования; б) организации рабочего места в боксе при работе с вирусами. 5. Самостоятельная работа студентов. Методические указания Занятие можно организовать следующим образом. После объяснения преподавателя и демонстрации (см. п. 4 занятий) студенты должны подготовить рабочее место для работы с вирусным материалом. Для этого они проводят его дезинфекцию раствором хлорамина, ставят на стол сосуд с 2%-ным дезраствором, контейнер для отходов, спиртовку, баночку со стерильной ватой, готовят инструменты (шприц, иглы, пинцет) для стерилизации. Отрабатывают приемы работы с пипеткой и грушей. Для ознакомления с документацией лаборатории можно использовать ветеринарное законодательство, инструкции о правилах работы в лабораториях. [стр. 7 ⇒]

Основные органы и учреждения, предназначенные для гигиенического обеспечения ВМФ, были созданы еще в довоенное время. Великая Отечественная война выдвинула ряд важных гигиенических проблем, требовавших разрешения в новых, боевых условиях. В связи с этим выявилась необходимость в усилении кадров врачей-гигиенистов и в некоторой перестройке санитарно-эпидемиологической работы, более четкой диференциации ее между специалистами гигиенического и противоэпидемического профиля. Врачи-гигиенисты были включены в состав руководящих органов медицинской службы флота в целом и отдельных флотов, в состав санитарно-эпидемиологических лабораторий флотов, флотилий и баз, а также в организации, осуществляющие санитарный надзор за кораблестроением. В деле санитарно-гигиенического обеспечения флотов и флотилий, наряду с руководящими медицинскими органами, большую роль сыграли санитарно-эпидемиологические лаборатории. Они не ограничивались выполнением санитарно-гигиенических анализов. Санитарно-эпидемиологические лаборатории превратились в местные научно-практические центры по разработке неотложных, выдвигаемых условиями боевой обстановки санитарно-гигиенических мероприятий. Организация лаборатории строилась на принципе стационарного ее размещения и работы, но с учетом возможности создания подвижных групп для приближения обслуживания к кораблям и частям, что на практике полностью себя оправдало. Кроме стационарного лабораторного оборудования в СЭЛ, на некоторых крупных кораблях и в частях были походные наборы: а) для исследования воды, б) для определения хлора и коагулянта в воде, в) для анализа пищевых продуктов (большой и малый набор). На некоторых флотах и флотилиях для обслуживания отдаленно расположенных кораблей и частей применялись катера-лаборатории. Так, на Волжской флотилии командованием для этой цели был выделен речной трамвай «Дзержинец». Площадь в 40 м2 была разделена перегородками на отсеки, в которых размещались бактериологическое, гигиеническое, противомалярийное и клинико-диагностическое отделения. Бактериологическое отделение было снабжено автоклавом, термостатом, сушильным шкафом, запасом питательных сред, реактивов и красок, что позволяло производить санитарно-бактериологические анализы воды и пищевых продуктов. Организация и оснащение рабочих мест на катере были таковы, что лабораторные исследования могли начинаться сразу же после прихода катера в район обслуживаемой части. В течение летнего сезона 1943 г. катер сделал два рейса вверх и вниз по Волге и прошел всего около 1 400 км. Опыт организации обслуживания кораблей и частей с помощью катера-лаборатории в условиях речной флотилии полностью себя оправдал. [стр. 19 ⇒]

При современном состоянии лабораторной техники невозможно дать обоснованное заключение о качестве воды в результате химического, бактериологического или микроскопического анализа. С помощью лабораторного анализа можно получить лишь косвенные указания на возможное загрязнение воды без установления причин загрязнения. Химический анализ может установить наличие загрязнения, но не обнаруживает источника заражения воды. Бактериологические методы анализа не всегда обнаруживают присутствие патогенных микробов в воде, и отрицательное заключение лаборатории еще не означает, что вода безопасна для употребления в сыром виде. Существенным недостатком бактериологического анализа воды является его продолжительность: 2—3 дня на определение коли-титра; 3 — 4 дня на выявление холерного вибриона; свыше 3 суток на поиски брюшнотифозной палочки. В условиях непрерывно меняющейся фронтовой обстановки это означает, что в войска результаты бактериологического анализа будут поступать после того, как пеобходимость в них миновала. ^ Ценность лабораторного исследования воды значительно возрастает, если химический и бактериологический анализ производится не однократно, а систематически. Поэтому в условиях стабильного фронта, при относительно длительном пребывании войск на занятом рубеже систематические лабораторные исследования воды приобретали более актуальное значение. Они позволяли целесообразно организовать водоснабжение войск, своевременно обнаружить и устранить дефекты водоисточников, обеспечить надежный контроль за качеством воды и стимулировать мероприятия по санитарнотехническому благоустройству источников снабжения водой. Существенную роль сыграли армейские лаборатории в установлении случаев туляремии водного происхождения. Лабораторный анализ воды прежде всего дает возможность при наличии многих водоисточников выбрать наилучший. Систематический лабораторный контроль позволяет во-время устаиовить изменения в составе воды, свидетельствующие о возможности или вероятности ее загрязнения. Далее, лабораторные исследования воды, отпускаемой потребителям, позволяют судить о качестве обработки воды и ее безопасности для питья. Наконец, периодические анализы воды хорошо охраняемого источника дают известиую гарантию безопасности воды для потребления в сыром виде, если не меняется режим эксплуатации и не происходит резкого изменения санитарной ситуации на территории расположения водоема и среда населения данного района. В условиях военного времени приходится всякую воду, независимо от результатов лабораторного исследования, считать сомнительной и подвергать кипячению или хлорированию. Лишь в относительно редких случаях, когда вода доставляется с городского водопровода или водного пункта, она может быть допущена к употреблению без предварительного обеззараживания. При длительном расположении войск на занятой ими территории и наличии надежной охраны водоисточников вода из трубчатых колодцев и родников, а в отдельных случаях из шахтных колодцев тоже может быть допущена к употреблению в необеззараженном виде. Отсутствие надежных и доступных методов прямого определения в воде патогенных микроорганизмов, сложность и длительность процедуры бактериологического исследования воды, вынуждали во время войны прибегать к методам косвенной оценки качества воды. К таким методам отио... [стр. 49 ⇒]

В системе органов здравоохранения имеются: • клинико-диагностические лаборатории общего или специального (биохимическая, бактериологическая, иммунологическая, цитологическая и др.) типов, входящие в состав больниц, поликлиник, диспансеров и других лечебнопрофилактических учреждений; • бактериологические лаборатории Госсанэпиднадзора (ГСН); • санитарно-бактериологические лаборатории ГСН; • санитарно-химические лаборатории ГСН; • центральные (ЦНИЛ), проблемные, отраслевые, учебные лаборатории вузов; • специализированные лаборатории (особо опасных инфекций и др.). В настоящее время лаборатории и более крупные лабораторные учреждения (отделы, институты, производственные предприятия), как правило, специализированные и работают с той или иной группой микробов. С вирусами работают в вирусологических лабораториях, располагающих соответствующим оборудованием и использующих специальные методы исследования. Существуют микологические и протозоологические лаборатории. Специализированный характер приобретают и бактериологические лаборатории, в которых работа концентрируется на определенных группах бактерий, например: риккетсиозные, туберкулезные, лептоспирозные, анаэробные и др. Иммунологические исследования проводятся в иммунологических лабораториях, хотя отдельные виды исследований могут выполняться и в микробиологических лабораториях, например серодиагностика инфекционных болезней. Лабораторная работа с патогенными микробами проводится в специально оборудованных лабораториях, обеспечивающих режим работы и технику безопасности, исключающих возможность заражения персонала и утечку микробов за пределы лаборатории. Необходимость четкой регламентации условий работы с микробами, в различной степени опасными для сотрудников лабораторий и окружающего населения, обусловила разработку классификации микробов, разбив их на 4 группы по степени их биологической опасности (классификация ВОЗ). 1-я группа — возбудители особо опасных инфекций; 2-я группа — возбудители высококонтагиозных эпидемических заболеваний человека; 3-я группа — возбудители инфекционных болезней, выделяемые в самостоятельные нозологические группы; 4-я группа — условно-патогенные микробы — возбудители оппортунистических инфекций. Нумерация групп микробов, принятая в России, отличается обратным порядком от классификации ВОЗ (где к 1-й группе относятся микробы самой низкой патогенности, а к 4-й группе — особо опасные). В соответствии с делением микробов на группы по степени биологической опасности лаборатории также делят на категории. По номенклатуре ВОЗ выделяют 3 категории микробиологических лабораторий: 1 базовые (основные или общего типа) лаборатории, которые в связи с конкретными особенностями работы могут быть оборудованы различными защитными устройствами; 2 режимные (изолированные) лаборатории, или лаборатории удержания; 3 лаборатории особого режима (максимально изолированные), или лаборатории максимального удержания (см. таблицу). [стр. 38 ⇒]

Бактериологический метод заключается в выделении чистой культуры микробавозбудителя путем посева материала, взятого от больного, на искусственные питательные среды с последующим изучением свойств выделенных микробов. Материалами для исследования могут служить кровь, спинномозговая жидкость, рвотные массы, кал, моча и т.д. Результативность бактериологического исследования зависит от многих условий. Материал от больного следует забирать до начала этиотропного лечения (назначения антибиотиков и других антибактериальных препаратов). Общим недостатком бактериологического метода является длительность исследования. Это связано с тем, что микробы растут медленно, поэтому окончательный результат может быть получен только через 2—4 дня, а иногда и позже. Для выделения каждого микроба требуется соответствующая питательная среда. В тех случаях, когда диагноз больного неясен, посевы производят одновременно на несколько питательных сред. Как правило, бактериологическое исследование предусматривает одновременное определение чувствительности выделенного микроба к основным группам антибиотиков и химиопрепаратов, что необходимо для выбора оптимальной этиотропной терапии. При проведении бактериологического исследования оптимальным условием является максимально быстрая доставка материала в лабораторию. Посев крови, например, осуществляют только непосредственно у постели больного. В тех случаях, когда быстрая доставка (в течение 2 — 3 ч) материала в лабораторию невозможна, используют консервирующие смеси, которые имеют различный состав в зависимости от целей бактериологического исследования. Взятый на исследование материал без консерванта при комнатной температуре хранить нельзя, поскольку в нем происходит размножение сопутствующей (сапрофитной) микрофлоры и возникают аутолитические процессы, которые губительно воздействуют на патогенную флору. При отсутствии в отделении консервирующих смесей материал для бактериологических исследований до посева нужно хранить в холодильнике при температуре +4° С или на льду. Правила взятия материала на бактериологическое исследование. Для сбора материала должна использоваться только стерильная посуда, не содержащая даже следов дезинфицирующих средств. Забор материала должен происходить в стерильных условиях, при этом необходимо исключить загрязнение взятого материала посторонней микрофлорой. Забор крови. Кровь для посева следует брать с соблюдением всех правил асептики с целью исключения попадания микроорганизмов из внешней среды. Посев крови целесообразно проводить при наличии лихорадки. Стерильные шприц и иглы, используемые для взятия крови, нельзя проверять на проходимость воздухом. Кровь забирают из локтевой вены в стерильный шприц в количестве 10— 20 мл (не менее 10 мл у взрослых и 5 мл у детей) либо у постели больного, либо в процедурном кабинете. Забор и посев крови осуществляются, как правило, двумя медицинскими работниками. Один человек обрабатывает кожу больного над пунктируемой веной, пунктирует ее и производит взятие крови, а другой открывает над пламенем спиртовки пробки флаконов, подставляет флаконы со средой под струю крови из шприца, затем повторно обжигает горлышко и пробку флакона и закрывает их. Место укола предварительно дезинфицируют 70%-м спиртом, затем 5%-й настойкой йода и снова спиртом. Извлеченную из вены иглу снимают не руками, а прокаленным пинцетом. Флаконы должны содержать достаточное количество жидкой питательной среды для того, чтобы при разведении крови (1:10 — 1:60) преодолеть ее естественные бактерицидные свойства. Флакон с питательной средой и кровью необходимо в тот же день доставить в лабораторию. Забор кала. Для бактериологического исследования испражнения собирают в судно или горшок, которые необходимо предварительно тщательно промыть кипятком, поскольку в них не должно содержаться даже остатков дезинфицирующих средств, губительно действующих на патогенные микробы. Материал забирается сразу после... [стр. 49 ⇒]

Для исследования нужно брать слизь, гной, фибриновые пленки, а не материал с примесью крови, присутствие которой может оказывать бактерицидное действие. Взятый на исследование материал следует как можно быстрее доставить в лабораторию и засеять на питательную среду, поскольку срок хранения испражнений в стерильной посуде ограничен двумя часами и по истечении этого срока материал уже не пригоден для дальнейшего исследования. Взятие испражнений на исследование может осуществляться и непосредственно из прямой кишки с помощью металлической петли. Забор спинномозговой жидкости (ликвора). Для бактериологического анализа спинномозговую жидкость обычно получают путем либо люмбальной пункции, либо пункции боковых желудочков мозга. Пункция должна проводиться только врачом. Ликвор для бактериологического исследования собирают в стерильную пробирку (1 — 2 мл) при проведении люмбальной пункции с соблюдением всех правил асептики и немедленно доставляют в лабораторию. Учитывая высокую чувствительность менингококков и некоторых других бактерий к температурному режиму, следует избегать воздействия низкой температуры. Забор желчи. Желчь для исследования (в том числе бактериологического) собирают при зондировании в процедурном кабинете отдельно по порциям А, В и С в три стерильные пробирки с соблюдением всех правила асептики. Полученные порции желчи должны быть доставлены в лабораторию не позднее, чем через 1 —2 ч от момента взятия. Забор мочи. На бактериологическое исследование берут среднюю порцию свободно выпущенной мочи в количестве 3 — 5 мл, собранную в стерильную посуду после тщательного туалета наружных половых органов. Катетеризация мочевого пузыря обычно не применяется, поскольку велика вероятность инфицирования мочевых путей. Она производится только в исключительных случаях, когда требуется уточнение локализации воспалительного процесса (в мочевом пузыре или в почках). Мочевой пузырь при этом опорожняют катетером и промывают раствором антибиотика, после чего с интервалом в 10 мин берут пробы мочи для исследования. При инфекционном процессе в почках во всех порциях мочи обнаруживаются микроорганизмы, а при инфекции мочевого пузыря моча остается стерильной. Как и при других бактериологических исследованиях, материал для исследования следует брать до начала антибактериальной терапии или в интервалах между курсами лечения. Бактерии, содержащиеся в моче, достаточно быстро размножаются при комнатной температуре. В связи с этим взятая на исследование моча должна быть максимально быстро доставлена в лабораторию (не позднее 1 —2 ч при хранении при комнатной температуре). Допускается хранение собранной мочи в течение суток в условиях холодильника. Нарушение режима хранения и доставки в лабораторию собранной мочи может повлиять на результаты при определении степени бактериурии. Забор мокроты. Мокроту на исследование собирают в стерильную банку утром во время приступа кашля. Перед процедурой больной должен провести туалет ротовой полости (почистить зубы, прополоскать рот кипяченой водой) с целью механического удаления остатков пищи, слущенного эпителия и микрофлоры. Забор материала из глаз. Материал для исследования забирают с пораженных мест в разгар воспалительного процесса с соблюдением правил асептики. Не менее чем за 5 — 6 ч до исследования должны быть отменены все медикаменты и процедуры. Взятие материала производит врач-окулист в следующем порядке. 1. Конъюнктива. Отделяемое берут с конъюнктивы платиновой петлей, предварительно прожженной в пламени спиртовки и остуженной, или стерильной стеклянной палочкой. При наличии обильного гнойного отделяемого используют стерильные ватные тампоны, которыми берут гной с внутренней поверхности нижнего... [стр. 50 ⇒]

Отделение реанимации и интенсивной терапии терапевтического профиля Отделение реанимации и интенсивной терапии гнойной хирургии Руководитель службы лабораторных и патоморфологических методов исследования Патологоанатомическое отделение Лаборатория клинической иммунологии Клинико-диагностическая лаборатория Бактериологическая лаборатория Областной организационно-методический и контрольный центр по клинической лабораторной диагностике Заместитель главного врача по работе с сестринским персоналом Заведующая приемным отделением Приемное отделение (кабинет терапевтический, кабинет педиатрический) Заведующая лечебно-диагностическим центром ОГУЗ «ГНОКБ» Лечебно-диагностический центр ОГУЗ «ГНОКБ» Заведующий отделом лучевой диагностики Отделение ультразвуковых и радиоизотопных методов исследования Рентгенорадиологическое отделение Рентгеновское отделение Отделение рентгеновской компьютерной томографии Заведующий аптекой Отдел медицинского оборудования Аптека Начальник отдела медицинской техники Заведующий отделом клинической эпидемиологии Заведующий отделом физиотерапии и функциональных методов исследования Отделение электрокардиографии и функциональной диагностики (кабинет ультразвуковой диагностики) Физиотерапевтическое отделение (кабинет ЛФК, водолечебница, кабинет гипербарической оксигенации) Заведующий отделением плановой и экстренной консультативной помощи Отделение плановой и экстренной консультативной помощи Заведующий отделом клинической фармакологии... [стр. 114 ⇒]

Авторы: Вязовая А.А., к.б.н., старший научный сотрудник лаборатории молекулярной эпидемиологии и эволюционной генетики ФБУН НИИ эпидемиологии и микробиологии имени Пастера, Санкт-Петербург, Россия; Ахмедова Г.М., к.м.н., зав. бактериологической лабораторией ГБУЗ «Противотуберкулезный диспансер Калининградской области», г. Калининград, Россия; Соловьева Н.С., к.м.н., зав. бактериологической лабораторией НИИ фтизиопульмонологии, Санкт-Петербург, Россия; Герасимова А.А., младший научный сотрудник лаборатории молекулярной эпидемиологии и эволюционной генетики ФБУН НИИ эпидемиологии и микробиологии имени Пастера, Санкт-Петербург, Россия; Старкова Д.А., к.б.н., научный сотрудник лаборатории молекулярной эпидемиологии и эволюционной генетики ФБУН НИИ эпидемиологии и микробиологии имени Пастера, Санкт-Петербург, Россия; Туркин Е.Н., главный врач ГБУЗ «Противотуберкулезный диспансер Калининградской области», г. Калининград, Россия; Журавлев В.Ю., к.м.н., руководитель отдела лабораторной диагностики НИИ фтизиопульмонологии, Санкт-Петербург, Россия; Нарвская О.В., д.м.н., профессор, ведущий научный сотрудник лаборатории молекулярной эпидемиологии и эволюционной генетики ФБУН НИИ эпидемиологии и микробиологии имени Пастера, Санкт-Петербург, Россия; научный консультант отдела лабораторной диагностики Санкт-Петербургского НИИ фтизиопульмонологии, Санкт-Петербург, Россия; Мокроусов И.В., д.б.н., зав. лабораторией молекулярной эпидемиологии и эволюционной генетики ФБУН НИИ эпидемиологии и микробиологии имени Пастера, Санкт-Петербург, Россия. [стр. 64 ⇒]

Важную роль приобретает преемственность в проведении лечебно-профилактических мероприятий по борьбе с гонорейной инфекцией урологических отделений и кожно-венерологических учреждений. Диагностическая ценность применяемых методов лабораторного исследования не равноценна. Бактериоскопия, как наиболее доступный и простой метод, позволяет достаточно надежно выявлять острые и подострые формы свежей гонореи. Однако при хронических и торпидных формах гонореи бактериоскопического исследования зачастую бывает недостаточно, к тому же не всегда представляется возможность провести дифференцирование гонококка от других нейссерий. Поэтому культуральный метод остается лучшим при диагностике гонореи. По общепризнанному мнению, при хронической гонорее у женщин даже с помощью бактериологического метода часто не удается выявить гонококк, несмотря на имеющиеся симптомы хронического воспалительного процесса в шейке матки или уретре. Известны случаи, когда у женщин с явлениями хронического воспалительного процесса гонококки не обнаруживаются, хотя достоверно известно, что эти женщины послужили источником заражения. Причины неудач в обнаружении гонококка при хронической гонорее связаны с тем,что при длительном пребывании гонококков в организме изменяются их морфологические и тинкториальные свойства, развиваются атипичные формы, устойчивые к антибиотикам, которые не выявляются с помощью существующих лабораторных методов. Для обеспечения высококвалифицированной доступной лабораторной диагностики гонореи, трихомониаза, хламидиоза, являющихся нередкой причиной лейкоцитоза в мазках, целесообразно централизовать лабораторную диагностику на базе бактериологических лабораторий кожно-венерологических диспансеров. Бактериологические исследования для подтверждения диагноза желательно проводить не только во всех кожновенерологических учреждениях, но и в базовых женских консультациях. Тщательное лабораторное обследование необходимо при нередко встречающемся симбиозе сопутствующей флоры с гонококками (хламидии, гарднереллы, трихомонады, вирусы, грибы рода Кандида), которые нивелируют специфический гонорейный характер процесса, затрудняя диагностику. Немалый вклад могут внести в решение проблемы активного выявления больных гонореей и трихомониазом смотровые кабинеты общеклинических больниц и амбулаторий, укомплектованных акушерками. Хотя основная их задача - раннее выявление онкологических болезни у женщин, но их целесообразно использовать при обследовании на венерические заболевания и другие болезни, передаваемые половым путем. Здесь требуется использование лабораторных исследований мазков на гонококки и др. Необходимо максимальное приближение специализированных лабораторных исследований к месту приема больных. Для решения этой проблемы, наряду с централизованными бактериологическими лабораториями, широко используются их филиалы, опорные пункты. Непосредственно в акушерско-гинекологических и урологических учреждениях (кабинетах) устанавливаются термостаты, куда помещаются пробирки с посевами на гонококки буквально в первые минуты после взятия патологического материала. На следующий день пробирки с посевами направляются в лаборатории для исследований, а лабораторией передаются взамен новые пробирки с питательной средой и результаты ранее выполненных исследований. В обязанности кожно-венерологических учреждений включается котроль за профилактикой гонореи в детских учреждениях. Каждый случай гонореи у детей расценивается как чрезвычайное происшествие, поэтому работники кожно-венерологического диспансера совместно с педиатрами, терапевтами, эпидемиологами обсуждают на совместных врачебных конференциях, отделах (управлениях) здравоохранения каждый случай заболевания ребенка с разбором обстоятельств, повлекших заражение. Тщательному обследованию подлежат члены семей и контакты больных гонореей. Необходимо проявлять оперативность в выявлении источников заражения и добиваться привлечения их к лечению в ближайшие 2-3 дня. [стр. 112 ⇒]

Смотреть страницы где упоминается термин "лаборатория бактериологическая": [80] [60] [186] [187] [217] [100] [79] [11] [93] [46] [47] [4] [18] [24] [59] [223] [6] [15] [18] [8] [9] [21] [6] [5] [52] [4] [6] [87] [95] [130] [12] [19] [49] [50] [51] [51] [10] [50] [138] [140] [94] [96] [97] [98] [99] [173] [91] [54] [86] [1]