Справочник врача 21

Поиск по медицинской литературе


Автоклавирование




Особый интерес к прионным заболеваниям возник в связи с эпидемией спонгиозной энцефалопатии коров в Англии и зарегистрированными в тот же период в Англии и Франции 11 случаями болезни Крейтцфельда—Якоба с атипично ранним началом. Хотя очевидных доказательств связи между этими двумя фактами не получено, ученым приходится учитывать сведения о высокой стойкости прионных белков (обработка формалином и автоклавирование тканей умерших не снижают их контагиозности). В документированных случаях передачи болезни Крейтцфельда—Якоба от одного человека к другому инкубационный период составлял 1,5—2 года. [стр. 416 ⇒]

Сывороточный вир сный гепатит вызывает я вирусом В, оторый стойчи к химическим и физическим факторам, он теряет свои патогенные войства при автоклавировании (120°С 45 мин), стерилизации сухим жаром (180 С, 60 мин) или кипячении после обязательной тщательной механической очистки инструментов от следов крови с последующей обработкой детергентами (не менее 30 мин). Вирус В передается при акушерских операциях, гемо-трансфузии, введении лекарственных средств, взятии крови из вены и пальца, при половом акте, а также при прохождении ребенка через родовые пути. [стр. 258 ⇒]

Примечание редакторов: чёрная резина, используемая для изготовления некоторых мешков, при повторном автоклавировании весьма быстро теряет эластичность, поэтому необходимо убедиться не только в наличии мешка, но и в его исправности. Желательно использовать мешки создания постоянного положительного давления в дыхательных путях (рис. 2-2). Для профилактики реанимационных мероприятий ребёнка следует прикрыть одноразовой пелёнкой с гигроскопичной внутренней поверхностью. [стр. 27 ⇒]

С общим коридором детские палаты сообщаются через шлюз, где устанавливаются стол для медицинской сестры, два стула и шкаф для хранения суточного запаса автоклавированного белья. Каждый медицинский пост имеет разгрузочную палату для детей, матери которых контингента новорожденных и родильниц. Палаты для новорожденных должны быть обеспечены теплой водой, стационарными бактерицидными лампами, подводкой кислорода. В палатах важно поддерживать температуру воздуха в пределах 22-24 °С, относительную влажность 60%. Строгое соблюдение санитарно-эпидемиологического режима в отделениях новорожденных, как, впрочем, и во всем акушерском стационаре, является непременным условием работы. Особенно важно уделять внимание мытью рук персонала, учитывая преобладание в последние годы среди госпитальных штаммов грамотрицательной флоры. Важным новорожденных, является работа персонала в резиновых перчатках. [стр. 17 ⇒]

Обычные протоколы обеззараживания не деактивируют прионы. Прионные белки устойчивы к протеазам, и автоклавирование само по себе неэффективно. Попытки очистить инструменты перед автоклавированием могут приводить к дальнейшей фиксации белка к инструментам. После того, как белок подсыхает, он становится еще более устойчивым к методам дезактивации. В результате Всемирная организация здравоохранения разработала рекомендации по борьбе с инфекцией при уходе за пациентами с подозрением на БКЯ:... [стр. 3339 ⇒]

Кусок обычной пластической массы (типа поролона), которая используется в производстве мебели, стерилизуют автоклавированием. Раствором бриллиантовой зелени намечают форму предполагаемого влагалищного муляжа. Расщепленный кожный лоскут извлекают из дерматома и помещают в стерильный физиологический раствор. Берут обычные противозачаточные кондомы и стерилизуют их автоклавированием. Как правило, используют два кондома, чтобы предотвратить попадание жидкости внутрь муляжа. [стр. 97 ⇒]

Данные виды пробирок широко применяются для забора первичных биологических образцов жидкости (кровь, лимфа), используются для всех видов иммунологического анализа, пригодны для хранения проб при пониженных температурах, пригодны для кипячения и автоклавирования, используются для центрифугирования; Б) пластиковые или стеклянные пробирки для микроанализа объемом от 0,5 до 2 мл. Пробирки этого типа могут быть с круглым, плоским или остроконечным дном и иметь специальные крышки (рис.1.3). Эти пробирки применяются для всех видов иммунологического анализ, для хранения проб при пониженных и отрицательных температурах. Их можно подвергать автоклавированию (для стерилизации), помещѐнный в них биологический материал можно центрифугировать в специальных центрифугах; В) полистироловые планшеты для микроанализа с круглодонными или плоскодонными лунками (рис.1.4). Объем лунок составляет 250-300 мкл, планшеты изготавливаются из специального полистирола, обладающего повышенной адсорбционной способностью для фиксирования на поверхности лунок клеток или белковых компонентов иммунохимических систем. Стандартный полистироловый планшет состоит из 96 лунок, расположенных горизонтальными рядами. Лунки имеют буквенную и цифровую нумерацию по горизонтали и вертикали соответственно. Полистирольные планшеты используются для проведения иммунохимического анализа (например ИФА), а также для клеточных иммунологических тестов. Кроме 96-луночных планшетов применяют и стрипы. Они представляют собой вариант полистирольного планшета, в котором каждый ряд ячеек 4... [стр. 4 ⇒]

Уничтожение микроорганизмов в окружающей среде Для уничтожения микроорганизмов в окружающей среде применяются стерилизация и дезинфекция. Стерилизация — это полное освобождение объектов окружающей среды от микроорганизмов и их спор. Существуют физические, химические и механические способы стерилизации. К наиболее распространенным способам физической стерилизации относятся автоклавирование и сухожаровая стерилизация. Автоклавирование — это обработка паром под давлением, которая проводится в специальных приборах — автоклавах. Автоклав представляет собой металлический цилиндр с прочными стенками, состоящий из двух камер: парообразующей и стерилизующей. В автоклаве создается повышенное давление, что приводит к увеличению температуры кипения воды. Паром под давлением стерилизуют питательные среды, патологический материал, инструментарий, белье и т.д. Наиболее распространенный режим работы автоклава — 2 атм., 120°С, 15—20 мин. Началом стерилизации считают момент закипания воды. К работе с автоклавом допускаются подготовленные спе66... [стр. 72 ⇒]

Шляпка образована так называемым гликопротеидом р-120, а ножка представлена gp-41. Весь гликопротеидный рецептор, включающий в себя и шляпку и ножку, называется gp-160. Вирус имеет округлую форму, средние размеры 100— 140 нм. Вирус является сложным, т. е. окружен суперкапсидом и белковыми оболочками. Геном вируса содержит 9 генов, из них 3 структурных и 6 регуляторных. Геном является очень изменчивым: постоянно идет процесс антигенного дрейфа. Существует несколько серологических рас вируса: 8 уже сформированных антигенных вариантов: А, В, С, D, Е, F, G, Н. Значение варианта вируса позволяет предположить источник заражения. Так, например, в Африке чаще всего встречаются антигенные варианты F, G, Н. Вариант В чаще всего передается среди гомосексуалистов. Высокая изменчивость, текучесть антигенного состава крайне затрудняет разработку специфической профилактики — разработку вакцины. Устойчивость вируса. Вирус обладает средней для сложных вирусов устойчивостью. Он мгновенно погибает при кипячении, но для того чтобы гарантировать, что вирус погиб, нужно кипятить 20—30 мин. Очень быстро погибает под действием различных дезинфектантов — перекись водорода, глутаральдегид, хлор-, фенол-содержащих препаратов. Для обработки рук и антисептических процедур рекомендуют применять хлоргексидин, спирт не очень быстро убивает вирус (70% за 10 мин). При нагревании до 180°С вирус в течение часа погибает — на 100%, при автоклавировании на 100%. В настоящее время методы, которые реально могут гарантировать уничтожение ВИЧ, — это автоклавирование и воздушная стерилизация. Все остальные методы являются методами интенсивной дезинфекции, но не стерилизации, поскольку никто не знает, чем покрыты вирионы в том материале, который обрабатывается. Вирионы могут находиться 222... [стр. 228 ⇒]

По-видимому, существует великое множество вариантов обеспечения производства стерильного продукта в зависимости от состава композиции и особенностей технологии производства. Для демонстрации некоторых вариантов рассмотрим процесс производства концентрата питательного крема "Идеальный", состав которого приведен в табл. 11.13. Разделим вначале все компоненты крема на две группы: 1) Термостабильные, способные выдержать условия автоклавирования. 2) Термически неустойчивые. В составе крема "Идеальный" к первой группе относятся: гель полиэтиленоксида, неорганические соли, гидроокись калия, глицерин и глюкоза. Глюкозу мы включили в этот список, несмотря на её способность при нагревании включаться в химический процесс карамелизации, так как полагаем, что за счет разбавления глюкозы остальными компонентами скорость реакции карамелизации будет достаточно низкой. Для дополнительного повышения термостабильности глюкозы мы вводим в состав термостабильной смеси масло зародышей пшеницы. Следует заметить, что основными источниками контаминации микроорганизмами итоговой смеси компонентов являются гель полиэтиленоксида и компоненты, находящиеся в кристаллическом состоянии. По гелю были проведены специальные эксперименты, результаты которых подтвердили повышение обсемененности продукта в процессе отбора проб из одной и той же емкости без соблюдения условий асептики. В свою очередь, любые кристаллические или порошкообразные препараты обладают способностью сорбировать микрофлору на поверхности частиц. После объединения всех перечисленных выше ингредиентов посредством интенсивного перемешивания и последующего автоклавирования при 121°С (30 мин) была получена стерильная основа крема, компоненты которой по весу составляют 89,17% от всей конечной композиции. Автоклавирование является широко распространенной при производстве стерильных медицинских препаратов стадией, аппаратурное оформление которой не представляет... [стр. 300 ⇒]

автоклавирование паром в течение 1 ч при Т=132°С или 2. погружение в 1N р-р гидроксида натрия (NaOH) на 1 ч при комнатной Т Мероприятия, обеспечивающие частичную эффективность 1. автоклавирование паром при Т=121°С или 132°С в течение 15-30 мин или 2. погружение в 1N р-р гидроксида натрия (NaOH) на 15 мин или использовании более слабой концентрации (<0,5N) в течение 1 ч при комнатной Т или 3. погружение в неразведенный или разведенный вплоть до 1:10 (0,5%) р-р гипохлорида натрия (домашний отбеливатель) в течение 1 ч77  Неэффективные мероприятия: кипячение, ультрафиолетовое или ионизирующее облучение, обработка оксидом этилена, спиртом, формалином, бето-пропионлактоном, детергентами, четвертичными соединениями аммония, Lysol®, спиртовым рром иода, ацетоном, перманганатом калия, обычное автоклавирование Патология При типичной форме БКЯ наблюдается классическая гистологическая триада: потеря нейронов, пролиферация астроцитов и цитоплазматическая вакуолизация нейронов и астроцитов (спонгиозный статус) при отсутствии воспалительной реакции. Могут страдать все части ЦНС, но имеется предрасположенность к поражению коры мозга и базальных ганглиев. В 5-10% случаев эти изменения сочетаются с отложением амилоидных бляшек. Определяющим является иммуноокрашивание на PrPres. Клинические проявления В a случаев первоначально наблюдаются слабость, нарушения сна, снижение аппетита. Другая a больных имеет неврологические симптомы, включая нарушения памяти, спутанность, изменение поведения. В оставшейся a случаев имеются очаговые симптомы, включающие мозжечковую атаксию, афазию, зрительные нарушения (включая корковую слепоту) или гемипарез. Типичное течение заболевания является неумолимым, наблюдается прогрессирование деменции, часто заметное от недели к неделе, с последующим быстрым развитием пирамидных нарушений (слабостью и ригидностью конечностей, патологическими рефлексами) и более поздними экстрапирамидными нарушениями (тремором, ригидностью,... [стр. 464 ⇒]

Правильный ответ: а 6. ДЛЯ ИЗГОТОВЛЕНИЯ ВКЛАДОК ВОЗМОЖНО ПРИМЕНЕНИЕ: а) пластмассы б) керамики в) благородных сплавов г) нержавеющей стали д) всего вышеперечисленного. Правильный ответ: д 7. ПРЯМОЙ МЕТОД ИЗГОТОВЛЕНИЯ ВКЛАДКИ ОЗНАЧАЕТ: а) изготовление вкладки из фотокомпозита на модели; б) изготовление восковой модели вкладки непосредственно в полости рта; в) изготовление вкладки из фотокомпозита непосредственно на зубе с последующим выведением, доработкой и фиксацией. Правильный ответ: в 8. ДЛЯ ДОРАБОТКИ ФОТОКОМПОЗИТНОЙ ВКЛАДКИ ПРОВОДЯТ А) КИПЯЧЕНИЕ В ТЕЧЕНИЕ 15 МИН.; б) автоклавирование в течение 5 мин.; в) обжигание; г) шлифование и полирование; д) кипячение в течение 15 мин., автоклавирование в течение 5 мин., шлифование и полирование; Правильный ответ: д 9. ДЛЯ ИЗГОТОВЛЕНИЯ ВКЛАДОК ВОЗМОЖНО ПРИМЕНЕНИЕ: а) пластмассы б) керамики в) благородных сплавов г) нержавеющей стали д) всего вышеперечисленного. Правильный ответ: д 10.ВКЛАДКИ МОГУТ БЫТЬ: а) пластмассовые б) фарфоровые в) металлические г) комбинированные д) все выше перечисленное. Правильный ответ: д 11.ВЫБЕРИТЕ МАТЕРИАЛЫ ДЛЯ ВКЛАДКИ БОКОВОЙ ГРУППЫ ЗУБОВ: а) золото 900 пробы; 90... [стр. 90 ⇒]

ПРИ ПОДГОТОВКЕ ПОЛОСТИ ЗУБА ПОД ВКЛАДКУ ФОРМИРУЮТ ФАЛЬЦ С ЦЕЛЬЮ: а) предупреждения смещения б) исключения опрокидывающего момента в) лучшей фиксации и прилегания г) исключения сколов д) исключения рассасывания цемента. Правильный ответ: в 23. ТРЕБОВАНИЯ К ШТИФТУ, ОБЕСПЕЧИВАЮЩИЕ ХОРОШУЮ ФИКСАЦИЮ В КАНАЛЕ КОРНЯ: а) асимметричность формы; б) наличие насечек; в) соответствие размерам канала; г) необходимая длина; д) отсутствие насечек, гладкая поверхность штифта; е) все верно, кроме асимметричность формы и отсутствие насечек, гладкая поверхность штифта Правильный ответ: е 24. МОДИФИКАЦИИ МОДЕЛИРОВАНИЯ ШТИФТА И КУЛЬТИ ПО КОПЕЙКИНУ В.Н.: а) припасовка металлического проволочного штифта с последующей моделировкой культовой вкладки из воска; б) моделировка штифта и культовой вкладки из воска: в) моделировка штифта и культовой вкладки из пластмассы: г) стандартные штифты и культя овальной формы из металла с последующей моделировкой коронковой части из композитного материала д) моделировка штифта и культовой вкладки из воска, моделировка штифта и культовой вкладки из пластмассы Правильный ответ: д 25. ДЛЯ ДОРАБОТКИ ФОТОКОМПОЗИТНОЙ ВКЛАДКИ ПРОВОДЯТ а) кипячение в течение 15 мин.; б) автоклавирование в течение 5 мин.; в) обжигание; г) шлифование и полирование; д) кипячение в течение 15 мин., автоклавирование в течение 5 мин., шлифование и полирование Правильный ответ: д... [стр. 93 ⇒]

Большие требования предъявляются и к рабочему персоналу; от него требуются высокая грамотность и неукоснительное соблюдение правил асептики и антисептики. Лиц с хроническими воспалительными заболеваниями среднего уха, полости носоглотки и т. д. к работе не допускают. Но даже при самом тщательном соблюдении всех инструкций нередко приходится наблюдать случаи бактериального загрязнения анатомических препаратов от 3,4% до 22,3%. Особенно часто это случается при заготовке кожи, нижней челюсти, тканей, располагающихся в брюшной полости и вблизи от нее, при получении ксенои фетотрансплантатов, а также тканей, взятых у трупов с множественными повреждениями. Многими исследователями была доказана недостаточная надежность забора материала в асептических условиях. Сейчас в связи с возросшим инфекционным фоном этот способ применяют для заготовки биологических трансплантатов крайне редко. Стерилизация, наоборот, открыла новые возможности, позволяющие брать ткани от трупов людей и животных в любых условиях. Она находит все более широкое применение в нашей стране и за рубежом. Здесь необходимо подчеркнуть, что стерилизация посмертных тканей в отечественном здравоохранении узаконена специальным приказом М3 СССР № 482 от 14.06.1972 г. Все применяемые в настоящее время стерилизующие средства принято подразделять на физические и химические. К первым можно отнести автоклавирование, у-излучение и быстрые электроны, к вторым — антибиотики, (3-пропиолактон, этилена оксид, катамин АБ, хлоргексидин, надмуравьиную кислоту, диоцид, новосепт, формалин и др. Автоклавированная кость заведомо стерильна и менее антигенна, чем... [стр. 450 ⇒]

Требования к режиму работы Работу с патогенными биологическими агентами (ПБА) III–IV групп патогенности выполняют специалисты с высшим и средним специальным образованием, прошедшие специальную подготовку. Персонал допускается к работе с ПБА только после проведения инструктажа по соблюдению требований биологической безопасности; последующие инструктажи проводятся не реже 2 раз в год. Доставка в лабораторию материала для исследования осуществляется в специальных контейнерах, биксах или сумках-холодильниках; доставляемые емкости с жидким материалом должны быть закрыты резиновыми или пластмассовыми пробками, исключающими выливание содержимого во время транспортирования. Не допускается доставка материала в хозяйственных сумках, чемоданах, портфелях и других предметах личного пользования. Прием и разборка материала, доставленного на исследование, проводится с соблюдением мер предосторожности; персонал диагностических лабораторий должен использовать маски и резиновые перчатки; емкости с ПБА помещаются на поднос или лоток, покрытый многослойной марлевой салфеткой, смоченной дезинфицирующим раствором. Во время работы двери боксов и предбоксников должны быть закрыты; выход из бокса во время проведения работы запрещается. Заражение животных в боксах проводится двумя сотрудниками (врачом и лаборантом). При пипетировании необходимо пользоваться только резиновыми грушами или автоматическими устройствами; пипетирование ртом в лабораториях строго запрещено. Перед использованием посуда, пипетки, оборудование, шприцы должны быть проверены на целостность и исправность. Во время работы все инструменты, имевшие контакт с ПБА III–IV групп патогенности, фламбируются в пламени горелки или помещаются в емкости с дезинфицирующим раствором. Автоклавирование проводится персоналом, имеющим свидетельство об окончании специальных курсов. По окончании работы все объекты, содержащие ПБА, должны быть убраны в хранилища (холодильники, термостаты, шкафы); в обязательном порядке производится дезинфекция рабочих поверхностей столов. Рабочий стол по окончании работ с ПБА III–IV групп патогенности обрабатывается дезинфицирующим раствором. Остатки ПБА III–IV групп патогенности уничтожаются автоклавированием или путем погружения в дезинфицирующие растворы. Отработанные ПБА III–IV групп патогенности, посевы, нефиксированные препараты для микроскопии не должны оставаться необеззараженными на рабочих столах; не допускается оставлять подлежащий обеззараживанию материал, содержащий ПБА III–IV групп патогенности, на следующий день; запрещается сброс в канализационную... [стр. 294 ⇒]

Паровой метод стерилизации. Применяют для изделий из коррозионностойких металлов, стекла, изделий из текстильных материалов (хирургическое белье, перевязочный материал), резины (перчатки, трубки, катетеры, бужи), металла и стекла. Автоклавирование проводится при 2,0?0,2 атм в течение 20 мин при температуре 132,0?2,0 ?С для изделий из стекла, стойких металлов, текстильных материалов, силиконовой резины. При давлении 1,1?0,2 атм ― в течение 45 мин при температуре 120,0?2,0?Сстерилизуются изделия из резины, латекса и отдельных полимерных материалов. Надежность паровой стерилизации контролируется с использованием визуального метода (время, давление, порядок работы на стерилизаторе) с записью данных каждого цикла автоклавирования в "Журнале работы автоклава" установленного образца. С целью оперативного контроля в установки и биксы, а также вне их закладываются термовременные химические индикаторы ИС-120, ИС-130, лента индикаторная "Комплай ТМ 1222" для паровых стерилизаторов. Контроль работы парового стерилизатора с использованием биотестов проводится 1 раз в 2 нед, с такой же периодичностью производится проверка показаний точности манометра, полнота удаления воздуха из стерилизуемых материалов, герметичность камеры. При проведении периодического контроля используются максимальные термометры СП-82 и др. В последние годы широко применяют стоматологические гигиенические центры ― устройства для промывания, смазки и стерилизации стоматологических наконечников. Подобные комбайны работают в автоматическом режиме, стерилизуя автоклавированием (температура, давление, время обработки). При стерилизации в автоклаве необходимо соблюдать правила укладки биксов. Ладонь руки должна свободно проходить среди материала в биксе. Материал в биксе укладывают перпендикулярно к отверстиям для хода пара. [стр. 759 ⇒]

Физические методы стерилизации: паровой, суховоздушный, методы инфракрасного облучения, фильтрования и радиационный. Химические методы стерилизации – газовый (формальдегид) и стерилизация химическими препаратами. В стоматологии применяют следующие основные виды стерилизации: кипячением, паром под давлением (автоклавирование), сухожаровая и химическая, гласперленовая. 1. Кипячение применяется для стерилизации цельнометаллических инструментов (гладилки, шпатели, пинцеты, зонды и т.д.). Раствор – дисциллированная вода с добавление натрия бикарбоната (питьевая сода). Время стерилизации – не менее 30 мин. Лицам перенесшим гепатит, инъекции проводят маркированными шприцами, которые затем подвергают утилизации. Стерилизация наконечников – кипячение в вазелиновом масле с последующим центрифугированием. Применяется в челюстно – лицевой хирургии. 3. Автоклавирование (пар под давлением) – для стерилизации перевязочного материала, белья, ватных шариков, турунд. Срок хранения материала после стерилизации не более 3-х суток. 4. Сухожаровая стерилизация – лотки с набором стоматологического инструментария, 10... [стр. 10 ⇒]

Режимы: 1) применение 6% перекиси водорода, время обработки — 6 часов; 2) 8% раствор лизофармина, время обработки -1 час. 3) Газовый. Используется озоновый стерилизатор. Стерилизация проводится на протяжении 90 минут при температуре 40˚С. 4) Стерилизация в среде нагретых кварцевых гранул. Предназначена для стерилизации мелкого инструментария (боры). Для этого используется гласперленовый стерилизатор, а стерилизация проводится при температуре 230˚С в течение 5-10 секунд. Контроль режимов работы стерилизаторов проводится с использованием индикаторов стерилизации одноразового применения ИС-180 или ИС-160 производства “Винар” (Москва), “ Интест-П-134/5-02”, “ Интест-П121/20-01”, “Винар” (Москва). Закладка тестов проводится в автоклаве вне упаковки. Риск заражения различными инфекциями в кабинете стоматолога остается постоянно высоким. Попадание микроорганизмов на инструменты происходит в результате контакта с твердыми тканями зуба, слюной, кровью пациента. Тем самым эти инструменты как возможные носители инфекции являются потенциально опасными для пациентов и персонала. Одним из условий безопасности лечения пациентов является строгое соблюдение правил асептики и антисептики, что включает в себя все этапы дезинфекции, предстерилизационной очистки и стерилизации инструментов. Обработка инструментов и оборудования должна проводиться в соответствии с действующими нормативными документами. Вместе с тем, в связи с появлением новых дезинфицирующих средств и технических устройств, способы обработки инструментов в отдельных случаях видоизменяются с целью повышения ее надежности. В работе стоматолога наконечник является одним из наиболее часто используемых и дорогостоящих инструментов. Наконечники имеют сложную конструкцию и состоят из ряда деталей, чувствительных к внешним воздействиям (замачиванию, ударам). В связи с этим стерилизация наконечников требует особых условий обработки. Предусмотренные нормативными документами методы и средства обработки инструментов и оборудования позволяют надежно обработать наконечник и тем самым исключить передачу инфекции через него. Химический метод стерилизации наконечников по известным причинам недопустим, поэтому используется автоклавирование, причем не для всех типов наконечников. В соответствии с Методическими рекомендациями 2001 г. автоклавированию после дезинфекции и очистки могут подвергаться наконечники, в инструкции к которым это допускается. Последовательность и особенности обработки наконечников представлены в табл. 2 и на рис. 168. 152... [стр. 154 ⇒]

Отходы группы Г собираются и упаковываются в одноразовую твердую упаковку (отходы 2-3 классов токсичности), с черной цветовой маркировкой «Опасные отходы. Группа Г» или одноразовую мягкую упаковку (отходы 4 класса токсичности), которая маркируется надписью «Отходы группы Г». На упаковку наносится код подразделения, название организации, дата, фамилия ответственного за сбор отходов лица. 242. Степень токсичности отходов группы Г определяется согласно действующим нормативным документам. 243. Не допускается пересыпать отходы групп Б и В из одной емкости в другую, устанавливать емкости около электронагревательных приборов, утрамбовывать любые отходы руками, осуществлять сбор отходов без СИЗ. 8.2. ОБЩИЙ ПОРЯДОК ПРОВЕДЕНИЯ ДЕЗИНФЕКЦИИ ОТХОДОВ И МНОГОРАЗОВОГО ИНВЕНТАРЯ 244. Отходы групп Б и В перед сбором в одноразовую упаковку должны быть обязательно обеззаражены в соответствии с действующими нормативными документами. Дезинфекция отходов осуществляется методами и средствами по режимам, допущенным к применению Министерством здравоохранения Республики Беларусь. При обеззараживании отходов подгрупп Б2, Б4 методом автоклавирования или другим регламентированным Министерством здравоохранения Республики Беларусь методом с использованием зарегистрированного оборудования для обработки и обеззараживания отходов (сбор отходов непосредственно после использования в непрокалываемые емкости, режим автоклавирования – 110 С, 20 минут), предварительное обеззараживание химическим методом не проводится. 245. Очистка и дезинфекция многоразовых сборников для отходов группы А производится ежедневно. 246. Дезинфекция контейнеров для сбора отходов группы Б производится один раз в неделю. 247. В случае аварийных ситуаций, при обнаружении открытого нахождения отходов внутри контейнеров, дезинфекция проводится немедленно. 8.3. ОБЕЗВРЕЖИВАНИЕ ОТХОДОВ 248. Отходы группы А (подгруппа А1), относящиеся к вторичным материальным ресурсам (стекло, бумага, пластмасса, резина, текстиль и другие), собираются раздельно и сдаются на переработку; 249. Обезвреживание оставшейся части отходов группы А осуществляется путем захоронения на полигонах твердых коммунальных отходов или других объектах размещения отходов. [стр. 37 ⇒]

Независимо от того, что вы предпочитаете: роторные технологии или ручной инструмент, эффективность механической обработки канала во многом зависит от того, насколько остро заточены режущие грани файла или римера. Изначально качественный инструмент всегда имеет очень острую заточку рабочих граней, которые не затупятся даже после нескольких циклов стерилизации. Но это только при бережном уходе и правильном хранении, ведь если инструменты стерилизуются вроссыпь, а хранятся в чашке Петри вперемешку и впритык друг к другу, они очень быстро затупятся, что существенно снизит их эффективность. Поэтому у каждого инструмента должно быть свое место, где он может стерилизоваться и храниться, не соприкасаясь с другими. Для хранения и бережной стерилизации инструментов VDW предлагает специальные боксы, которые представляют собой контейнеры из металлизированной пластмассы с крышками. Все боксы имеют перфорированное дно для эффективной стерилизации, на которое укладывается бумага для автоклавирования с индикатором качества стерилизации. В каждый бокс помещается специальная вставка с отверстиями для инструментов – модуль. VDW предлагает два вида модулей: степ-модуль – вставка для хранения и стерилизации инструментов и сокет-модуль с маркированными в соответствии с ISO крупными ячейками для гуттаперчивых и бумажных штифтов. По окончании приема модуль легко вынимается из бокса и отправляется в мойку, что позволяет избавить инструменты от избыточной дезинфикационной обработки и сохранить их внешний вид и работоспособность. Очень экономит время медсестры возможность установить модуль с промытыми инструментами опять в бокс и провести одновременно автоклавирование и бокса, и модуля с инструментами. После стерилизации инструмент остается стерильным в течение 4 недель в закрытом боксе. Удобно! Боксы поставляются как вместе с модулями, так и без них. Для ручных инструментов VDW предлагает Мини-Бокс (Mini-Box) с мини степ-модулем,... [стр. 15 ⇒]

Становление представлений о спектре действия тканевой плацентарной терапии действие, способствует снятию интоксикации, нормализует гомеостаз, формулу крови и биохимические показатели. Высокая антитоксическая активность плацентарной терапии заключается в обезвреживании и удалении продуктов распада, а также в нормализации нарушенных функций органов детоксикации (печень, почки, лимфатическая система, кожа). Эти эффекты обусловлены взаимно потенцирующим действием аминокислот, факторов роста, нуклеината натрия, витаминов и других компонентов, входящих в состав плацентарной ткани. Так, глютаминовая кислота нейтрализует токсичные азотистые шлаки, а также способна связывать эндогенный аммиак, который накапливается в большом количестве при функциональных нарушениях печени. Аргинин способствует восстановлению перекисного окисления липидов и усиливает регенеративные процессы в печени, что приводит к устранению деструктивных явлений и нормализации метаболизма. Фактор роста гепатоцитов оказывает свое гепатопротекторное действие посредством пролиферативного влияния на гепатоциты и фибринолитического — на соединительную ткань [24]. Консервация плаценты холодом и автоклавирование несколько изменяют состав плацентарной ткани. При автоклавировании разрушаются сложные полипептиды (в первую очередь гормоны), некоторые ферменты, частично витамины и т. д. При консервации плаценты жизненные процессы в переживающей ткани осуществляются за счет существенной перестройки процессов обмена. Образующиеся при этом вещества в течение определенного времени и являются причиной повышения устойчивости ткани к неблагоприятным условиям. Изучение химической природы адаптогенных регуляторов в консервированной плаценте показало, что в процессе охлаждения в ее ткани, вследствие преобладания анаэробного обмена, происходит значительное накопление дикарбоновых кислот и аминокислот, обладающих более высокой степенью биологического воздействия [25]. Фракции, содержащие смесь дикарбоновых кислот (янтарная, травматиновая, щавелевая и др.), более активны по сравнению с аминокислотными фрак79... [стр. 79 ⇒]

). Поэтому широкого распространения этот способ не получил Более надежна стерилизация автоклавированием. Устройство автоклава для стерилизации паром под давлением отличается от конструкций стерилизатора, где происходит стерилизация текучим паром, тем, что он имеет специальный манометр, показывающий величину давления пара, и предохранительный клапан. Принцип автоклавирования заключается в том, что образующийся при кипении воды пар заполняет полость цилиндра автоклава и, не имея возможности выйти наружу, накапливается в нем. При этом по мере накопления пара в полости цилиндра повышается давление, величина которого фиксируется манометром. При давлении пара 2 атм. температура в полости цилиндра равна 1320С, что обеспечивает надежную стерилизацию всех предметов, находящихся в автоклаве. Время стерилизации 40 мин. Отсчет времени стерилизации ведется от момента, когда давление в полости автоклава достигает 1,5 атм. Предохранительный клапан отрегулирован так, что открывает выход для пара, если давление в автоклаве превышает допустимый уровень (обычно клапан удерживает давление на уровне 2 атм.). После того как процесс стерилизации закончен, прекращается нагревание воды, весь пар из автоклава выпускается через выпускной кран, а стерилизуемые предметы извлекаются. Стерилизация оптических приборов. Предстерилизационная подготовка эндоскопических приборов производится растворами А и Б (см. выше) с помощью марлевых салфеток. Манипуляционные каналы приборов чистят с помощью специальных щеточек. Эндоскопы стерилизовать высокими температурами нельзя. Поэтому для их стерилизации применяются следующие способы. 1. Опускание прибора на 10 мин. в спирт (оптика прибора не стерилизуется), а затем на 5 мин. в раствор сулемы 1:1000. Перед использованием прибор обрабатывается спиртом. 2. Рабочую часть прибора 3-кратно протирают одним 27... [стр. 28 ⇒]

Способы обработки операционного поля. 11. Принцип автоклавирования и устройство автоклава. 12. Способ стерилизации текучим паром и паром под давлением. 13. Как стерилизовать операционное белье и перевязочный материал? 14. Правила укладки операционного материала в бикс. 15. Способы контроля качества стерилизации. 16. Способы профилактики эндогенной инфекции. 19. Как устроен операционный блок и перевязочная с точки зрения асептики? 20. Правила выполнения операции с точки зрения асептики. По окончании занятия студент должен уметь: 1. Стерилизовать хирургический инструмент кипячением и автоклавированием. 2. Укладывать перевязочный материал для стерилизации в бикс. 3. Определять качество стерилизации. 4. Стерилизовать оптические приборы. 5. Подготовить руки для выполнения хирургических манипуляций. 6. Надевать стерильные халат, маску и перчатки. 7. Обрабатывать операционное поле. [стр. 40 ⇒]

Стерилизация автоклавированием — очень надежный способ обеспложивания. Чаще всего под давлением в автоклавах стерилизуют перевязочный материал (бинты, салфетки, тампоны и др.) и операционное белье (халаты, простыни, полотенца, колпачки). Иногда туда помещают фарфоровую и стеклянную посуду, эмалированные тазики, растворы и т. п. Перед автоклавированием материал и белье укладывают (неплотно) в специальные металлические коробки — биксы (рис. 25), а если их нет,—в холщовые мешки или пакеты. Имеющиеся на боковой стенке бикса отверстия открывают перед загрузкой автоклава и закрывают после стерилизации. В автоклав ставят одновременно несколько биксов. Продолжительность стерилизации зависит от показании манометра: при 1,5 атм (126,8°) —30 мин, при 2 атм (132,9°) — 32... [стр. 17 ⇒]

Однако инструменты после операций по поводу анаэробной инфекции и в группе риска по гепатиту кипятить не рекомендуется. Некоторые виды простых инструментов (пинцеты, зажимы, зонды и др.)> предназначенные для одноразового использования, могут стерилизоваться лучевым способом. Стерилизация режущих металлических инструментов Проведение стерилизации режущих инструментов с помощью термических методов приводит к их затуплению и потере необходимых для хи рурга свойств. Основным методом стерилизации режущих инструментов является холодный химический способ с применением растворов антисептиков. В последнее время в перевязочных режущие инструменты, как и нережущие, стерилизуются в сухожаровом шкафу, что приводит к некото рому снижению их остроты, но обеспечивает абсолютную стерильность. Самыми лучшими способами стерилизации являются газовая стерилизация и особенно лучевая стерилизация в заводских условиях. После дний метод получил распространение при использовании одноразовых лезвий для скальпеля и хирургических игл (атравматический шовный материал). Стерилизация резиновых и пластмассовых инструментов Основным методом стерилизации резиновых изделий является автоклавирование. При многократной стерилизации резина теряет свои элас тические свойства, трескается, что является некоторым недостатком ме тода. Допустимо также кипячение резиновых изделий в течение 15 минут. Пластмассовые изделия разового использования, а также катетеры и зонды подвергаются лучевой заводской стерилизации. Особо следует сказать о стерилизации перчаток. В последнее время наи более часто используются одноразовые перчатки, подвергшиеся лучевой заводской стерилизации. При многократном использовании основным методом стерилизации является автоклавирование в щадящем режиме: пос ле предстерилизационной обработки перчатки высушивают, пересыпают тальком (предупреждает слипание), заворачивают в марлю, укладывают в бикс и автоклавируют при 1,1 атм. в течение 30-40 минут или при 1,5 атм. — 15-20 минут. В экстренных случаях для стерилизации перчаток возможен следующий прием: хирург надевает перчатки и в течение 5 минут обрабатывает их тампоном, смоченным 96° этиловым спиртом. После надевания стерильных перчаток обычно их обрабатывают шариком со спиртом для снятия с поверхности талька или других веществ, препятствовавших слипанию резины. Стерилизация оптических инструментов Основным методом стерилизации оптических инструментов, требующих наиболее щадящей обработки с исключением нагревания, является газовая... [стр. 35 ⇒]

Профилактика имплантационной инфекции Стерилизация шовного материала стерилизация шелка: метод Кохера – мотки шелка моют в теплой воде с мылом, сушат, обезжиривают в эфире в течение 12 – 24 часов, затем помещают в 70% спирт на 12 – 24 часа, после чего кипятят в течение 10 минут. Хранят в герметично закрытых банках в 96% спирте, который меняют через каждые 7 дней. стерилизация капрона и лавсана: проводится автоклавированием. стерилизация кетгута: метод Ситковского – в парах йода; лучевой метод – гамма-облучением. стерилизация атравматических лигатур: заводским способом путем гамма-облучения. Контроль за предстерилизационной обработкой С целью контроля на наличие остатков моющего раствора проводят амидопириновую или фенолфталеиновую пробы, на наличие остатков крови – бензидиновую или орто-толуидиновую пробы. При наличии остатков моющего раствора или крови появляется изменение цвета контролирующих растворов. Контроль за стерилизацией: основан на изменении цвета тестиндикаторов; на эффекте плавления некоторых химических соединений; путем прямой термометрии; путем бактериологического контроля. При автоклавировании вместе со стерилизуемыми изделиями в биксы помещают запаянные стеклянные колбочки с химическими соединениями: порошки мочевины, бензойной кислоты с фуксином, которые плавятся при температуре выше 120 градусов. При... [стр. 13 ⇒]

Между пальцами прокладывается марля в 1-2 слоя. Перчатки дольше сохраняют прочность при химической стерилизации в 6% растворе перекиси водорода в течение 5 часов или в 4,8% растворе первомура в течение 20 минут (при такой химической стерилизации необходимо тщательно отмыть перчатки перед использованием стерильной водой). При длительной непрерывной работе перчатки необходимо периодически отмывать, не снимая с рук, раствором фурациллина 1:1000, стерильным изотоническим раствором натрия хлорида с последующим протиранием спиртом. Использованные перчатки, подвергаются дезинфекции в 3% растворе хлорамина (экспозиция 60 мин), 6% растворе перекиси водорода с 0,5% раствором синтетических моющих средств (экспозиция 1 час). Стерилизация шовного материала (только при отсутствии готового стерильного шовного материала в ампулах!) осуществляется автоклавированием (давление 1,1 атм, t - 120°С, экспозиция 60 мин) однократно, т.к. при повторном автоклавировании нить теряет прочность. Шовный материал перед первым употреблением подвергают бактериологическому контролю. Контроль работы стерилизаторов проводят в соответствии с действующими документами: физическим (с использованием контрольноизмерительных приборов), химическим (с использованием химических индикаторов) и бактериологическим (с использованием биологических индикаторов) методами. Параметры режимов стерилизации контролируют физическим и химическим методами. Эффективность стерилизации оценивают на основании результатов бактериологических исследований при контроле стерильности изделий медицинского назначения. Стерилизаторы подлежат бактериологическому контролю после их установки (ремонта), а также в ходе эксплуатации не реже двух раз в год. Контроль качества дезинфекции, предстерилизационной очистки и стерилизации изделий медицинского назначения проводят ответственные лица и специалисты, уполномоченные осуществлять государственный санитарно-эпидемиологический надзор. Стерилизация инструментов кипячением применяется только в крайнем случае при отсутствии сухожаровых шкафов и паровых шкафов в полевых условиях. После предстерилизационной обработки инструменты стерилизуют с помощью кипящей воды и пара в стерилизаторе, представляющем собой четырехугольную металлическую коробку. При отсутствии стерилизатора можно использовать чистую металлическую кастрюлю, таз и другие емкости. В стерилизатор наливают воду и добавляют гидрокарбонат натрия (двууглекислую соду) для получения 2% раствора. Стерилизатор включают в электрическую сеть или ставят на электрическую плитку, примус или газовую горелку. В сетку стерилизатора (лоток) укладывают инструменты и при закипании воды опускают в стерилизатор с помощью крючков. В этот момент кипячение прекращается. Началом стери... [стр. 75 ⇒]

; о 60 мин. 91. ИНСТРУМЕНТЫ АВТОКЛАВИРУЮТ ПРИ ДАВЛЕНИИ В 1,1 ATM. о 15 мин.; о 20 мин.; о 30 мин.; У 45 мин.; о 60 мин. 92. ПРИ АВТОКЛАВИРОВАНИИ СТЕРИЛЬНОСТЬ НЕ НАСТУПАЕТ, ЕСЛИ: У не соблюдаются режимы стерилизации; У отверстия в биксах закрыты; У биксы заполнены материалом слишком плотно; о в биксе нет индикатора; о мало материала в биксе. 93. ИЗВЛЕКАЯ БИКС ИЗ АВТОКЛАВА ПО ОКОНЧАНИИ СТЕРИЛИЗАЦИИ, о его открывают и проверяют состояние индикатора; о закрывают крышку автоклава; о выпускают воду из автоклава; У закрывают отверстия в биксе; о отключают электронагревательный прибор. 94. БИКС ПОСЛЕ АВТОКЛАВИРОВАНИЯ СЧИТАЮТ У стерильным; о нестерильным; о расстерилизованным; о стерилизованным; о частично стерильным. 95. СОДЕРЖИМОЕ БИКСА, КОТОРЫЙ ПОСЛЕ АВТОКЛАВИРОВАНИЯ НЕ ОТКРЫВАЛИ, СТЕРИЛЬНО В ТЕЧЕНИЕ о 1 суток; о 2 суток; У 3 суток;... [стр. 326 ⇒]

У в 6% растворе перекиси водорода в течение 6 часов; У в 20% растворе бионола в течение 10 часов. 101. ЛУЧЕВУЮ СТЕРИЛИЗАЦИЮ ПРИМЕНЯЮТ ДЛЯ ОБРАБОТКИ У изделий одноразового использования; о оптических приборов; о металлических инструментов; о операционного белья; У шовного материала. 102. В НАСТОЯЩЕЕ ВРЕМЯ ШОВНЫЙ МАТЕРИАЛ СТЕРИЛИЗУЮТ У гамма-излучением; о автоклавированием; о замачиванием в спирте; о замачиванием в растворе Люголя; о замачиванием в эфире. 103. В НАСТОЯЩЕЕ ВРЕМЯ ПЕРЧАТКИ СТЕРИЛИЗУЮТ о кипячением; о воздушным методом; У гамма излучением; о замачиванием в спирте; о протиранием фурацилином. 104. ДРЕНАЖИ СТЕРИЛИЗУЮТ о в сухом жару; У газовой стерилизацией.; о лизофармином; У автоклавированием; У гаммаизлучением. 105. РЕЗИНОВЫЕ ИЗДЕЛИЯ МОЖНО СТЕРИЛИЗОВАТЬ В 6% ПЕРЕКИСИ ВОДОРОДА, ПРИ 50°С о 60 мин.; о 120 мин.; о 150 мин.; У 180 мин.;... [стр. 328 ⇒]

При химическом методе стерилизации используют химические вещества в газообразном состоянии (газовый способ) или в виде растворов (жидкостный). Все инструменты после использования подвергают дезинфекции - разбирают и погружают в 3 % раствор хлорамина на 60 мин или 4 % раствор перекиси водорода на 90 мин. По окончании дезинфекции проводят предстерилизационную очистку. Медицинский инструментарий промывают проточной водой над раковиной в течение 30 с до полного удаления запаха дезинфицирующего средства. Промытый и продезинфицированный медицинский инструментарий замачивают в горячем (50-55 °С) моющем растворе в течение 15 мин при полном погружении изделий. После замачивания инструменты моют в том же растворе. Вымытый медицинский инструментарий прополаскивают под проточной водой в течение 3 мин, а затем 30-40 сек в дистиллированной воде. Промытый медицинский инструментарий сушат горячим воздухом в сушильном шкафу при температуре 85 °С до полного исчезновения влаги. Металлические инструменты, стеклянные приборы и резиновые трубки стерилизуют с помощью высоких температур, губительно действующих на белковую молекулу микробной клетки. Для этого используют кипящую воду (100 °С) - метод кипячения; сухой жар (180-200 °С) - сухожаровой метод; пар (100- 140 °С) - метод автоклавирования. Стерилизацию кипячением производят в металлических стерилизаторах с сеткой и плотно закрывающейся крышкой. В стерилизатор наливают воду и добавляют гидрокарбонат натрия для получения 2 % раствора. Жидкость доводят до кипения, опускают в нее разобранные и сложенные на сетке инструменты. Когда вода снова закипит, замечают время начала стерилизации. По окончании стерилизации сетку с инструментами вынимают из кипятильника, после чего инструменты раскладывают на инструментальном столике, покрытом стерильной простыней. Сроки стерилизации кипячением следующие: металлические инструменты - 20 мин, стеклянные приборы - 20 мин, резиновые предметы - 10 мин. Режущие инструменты лучше кипятить без добавления соды в течение 5 мин, предварительно обернув режущую часть марлей. Шприцы и иглы лучше не подвергать кипячению, а стерилизовать посредством автоклавирования или сухожаровым методом. Сухожаровую стерилизацию инструментов проводят в специальном герметически закрывающимся шкафу, в котором инструменты укладывают на специальные противни. Температура воздуха в сухожаровой камере достигает 200 °С, длительность стерилизации 40 мин. Стерилизация изделий медицинского назначения паровым методом осуществляют в паровом стерилизаторе (автоклаве). При наличии ультразвукового аппарата можно осуществлять стерилизацию инструментов погружением их в ванну с 20 % раствором хлоргексидина биглюконата. Рекомендуемая экспозиция после включения аппарата - 1 мин. Катетеры, оптические приборы и электрохирургические инструменты, а также обычные инструменты при условии оснащения специальной аппаратурой проходят газовую и лучевую стерилизацию. Принцип работы современных стерилизационных систем основан на использовании плазмы (газ перекиси водорода). Свойства пара перекиси водорода вместе с действием низкотемпературной плазмы газа (45 °С) гарантируют эффективность стерилизатора по отношению к микроорганизмам с самой высокой сопротивляемостью. Отсутствие влаги исключает возникновение коррозии, в процессе стерилизации не нарушаются функциональные характеристики даже самых тонких инструментов. Перевязочный материал и белье, используемые во время операций и при перевязках, должны быть стерильны. Операционное белье, марлевые салфетки, а также инструменты стерилизуют путем автоклавирования. В последнее время широко применяют одноразовое белье. В комплект стерильного 46... [стр. 46 ⇒]

Подготовка и обработка операционного поля: Подготовка производится в предоперационном периоде и включает мытье тела с мылом накануне и бритье операционного поля непосредственно перед операцией. При этом достигается снижение уровня микробной контаминации кожи. Для обработки операционного поля в настоящее время чаще всего используют хлоргексидин, йодофоры, первомур. Соблюдаются следующие правила обработки: Обработка должна быть многократной в ходе выполнения операции, максимально широкой, и последовательности от центра к периферии, загрязненные участки обрабатываются в последнюю очередь. - Стерилизация инструментов, перевязочного материала и белья включает 4 основных этапа: предстерилизационную подготовку, укладку и подготовку к стерилизации, стерилизацию, хранение стерильного материала. Для инструментов обычно используется сухожаровая стерилизация или автоклавирование. Оборудование, не подлежащее термической обработке (эндоскопическое оборудование, аппараты для ингаляционного наркоза, аппараты для искусственного кровообращения и пр.) обрабатывается химическими методами - применяется газовая стерилизация, химические средства, а также гамма-излучение. Стерилизация перевязочного материала и белья, как правило, осуществляется автоклавированием, как и изделий из пластических материалов (дренажи, зонды). Существующие методы контроля стерильности делятся на прямые (бактериологические исследования) и непрямые (определение температуры, при которой производилась термическая стерилизация, с помощью различных индикаторов). [стр. 8 ⇒]

Способы дезинфекции и стерилизации: физические (автоклавирование, кипячение, ультразвук, ультрафиолетовое облучение) и химические (растворы антисептиков, газы) выбирают индивидуально в зависимости от свойств материала, из которого изготовлены эндоскопы. Автоклавирование фиброэндоскоиов невозможно, а газовая стерилизация не нашла еще широкого применения. Стерилизация в парах окиси этилена [1кес1а 3., 1974] — самый эффективный (убиваются все микроорганизмы, включая споры и вирусы) и щадящий метод обработки фиброскопов, но она технически сложна, продолжительна (экспозиция 6—10 ч) и требует длительного периода дегазации, поскольку полимеры абсорбируют газ и удерживают его некоторое время. Этот вид стерилизации можне применять как метод эпизодическое обработки приборов третьей группы но он, обладая высокой эффектив ностью, в то же время ограничивае сроки их повторного использованш Стерилизация в парах формалин также не получила признания ввщ многочисленных недостатков метод Бактериологические исследования п казали, что при его применен! биопсийный канал в большинст случаев остается нестерильным [К леспикова Г.Д., Корнева Т.К., 198( Наиболее широко в клиническ практике применяют химическ (холодную дезинфекцию эндоског путем замачивания их в различи бактерицидных и бактериоста ческих жидкостях (кюветный спос< йод-, хлорсодержащие и спирто растворы (0,5% спиртовой раст хлоргексидина — гибитан, 1 % р вор хлорида бензалкония — рок 0,1 % раствор диоцида и 70 % этг вый спирт) с экспозицией 5—10 I Мнения об эффективности средств холодной дезинфекции, бенно применяемых при кювеспособе обработки, спорны, но гих, более эффективных средств... [стр. 19 ⇒]

Стерилизацию проводят паром под давлением (автоклавирование) или многочасовым (более 5 часов) замачиванием в свежем растворе глутаральдегида (125). Для ВУД используют более короткое замачивание в растворе глутаральдегида или гипохлорита натрия (125). Использование фенола или антисептиков не обеспечивает ВУД. Если проводилась холодная обработка (замачивание в растворах), инструменты после нее необходимо тщательно прополоскать. Инструменты, подвергнутые ВУД, можно прополоскать в кипяченой воде, подвергнутые стерилизации, ополаскивают в стерильной воде (более подробно обработка инструментов представлена в табл. 2.1). Некоторые производители выпускают аспираторы и канюли из высококачественного пластика, которые сделаны так, чтобы подвергаться стерилизации автоклавированием. Другие пластиковые инструменты под действием высокой температуры при стерилизации растрескиваются или плавятся. Чтобы применять надлежащий метод дезинфекции, медицинские работники должны всегда уточнять его в инструкциях по применению оборудования. Кроме того, необходимо следовать рекомендациям производителей для всех средств, используемых при дезинфекции. [стр. 63 ⇒]

Для того чтобы избежать контаминации спорообразующими микроорганизмами, желательно использовать одноразовые флаконы, хотя многоразовые простерилизованные флаконы могут сократить расходы на производство и утилизацию отходов. Чтобы предотвратить испарение, максимальная емкость контейнеров для антисептиков должна составлять 500 мл в палате и 1 л в операционной, и, идеально, если они будут использоваться как настенные дозаторы. Следует также иметь в наличии карманные герметичные флаконы емкостью не более 100 мл, которые раздаются индивидуально медицинским работникам, но при этом следует подчеркивать, что применение этих средств должно применяться только при оказании медицинской помощи. В отделении, где происходит приготовление антисептика или повторное заполнение емкостей, необходимо соблюдать нормы очистки и дезинфекции флаконов (например, автоклавирование, кипячение или химическая дезинфекция с применением хлора). Наиболее подходящей процедурой считается автоклавирование. Никогда не следует повторно заполнять флаконы многоразового использования, пока они не будут полностью опорожнены, а затем вымыты и продезинфицированы. [стр. 8 ⇒]

Поэтому возможность применения для стерилизации определённых средств оценивают наличием у них спороцидной активности, проявляемой в приемлемые сроки. Используемые в практике методы и средства должны обладать следующими свойствами: • уничтожать микроорганизмы и их споры; • быть безопасными для больных и медперсонала; • не ухудшать рабочие свойства изделий. В современной асептике используют физические и химические методы стерилизации. Выбор того или иного способа стерилизации зависит, прежде всего, от свойств изделия. Основными считают физические методы стерилизации. Физические методы стерилизации К физическим методам относят термические способы – стерилизацию паром под давлением (автоклавирование), стерилизацию горячим воздухом (сухим жаром), а также лучевую стерилизацию. Стерилизация паром под давлением (автоклавирование). При этом способе стерилизации действующим агентом служит горячий пар. Стерилизацию просто текучим паром в настоящее время не используют, так как температура пара в обычных условиях (100%С) не достаточна для уничтожения всех микробов. В автоклаве (аппарат для стерилизации паром под давлением) возможно нагревание воды при повышенном давлении. Это повышает точку кипения воды и соответственно температуру пара до 132,2 С° (при давлении 2 атм). Хирургические инструменты, перевязочный материал, бельё и другие материалы загружают в автоклав в специальных металлических коробках – биксах Шиммельбуша. Биксы имеют боковые отверстия, которые перед стерилизацией открывают. Крышку бикса плотно закрывают. После загрузки биксов автоклав закрывают герметичной крышкой и проводят необходимые манипуляции для начала его работы в определённом режиме. Работу автоклава контролируют при помощи показателей манометра и термометра. Существуют три режима стерилизации: При давлении 1,1 атм (t = 119,6 o C) – 45 мин При давлении 2 атм (t =132,9 о С) – 20 мин По окончании стерилизации биксы некоторое время остаются в горячем автоклаве для просушки при немного приоткрытой дверце. При извлечении биксов из автоклава закрывают отверстия в стенках биксов и отмечают дату стерилизации (обычно на прикреплённый к биксу кусочек клеёнки). Закрытый бикс сохраняет стерильность находящихся в нём предметов в течение 72 ч, если на дно была постелена простыня, и материал укрыт ею. Кроме того, в настоящее время используются коробки, в крышке которых расположен бактериальный фильтр. Хранить в них материал можно до 21 суток. Стерилизация горячим воздухом (сухим жаром). 7... [стр. 7 ⇒]

Стерилизация резиновых и пластмассовых инструментов. Основной метод стерилизации резиновых изделий – автоклавирование. При многократной стерилизации резина теряет свои эластические свойства, трескается, что признано некоторым недостатком метода. Пластмассовые изделия разового использования, а также катетеры и зонды подвергают лучевой заводской стерилизации. Особо следует сказать о стерилизации перчаток. В последнее время наиболее часто используют одноразовые перчатки, подвергшиеся лучевой заводской стерилизации. Стерилизация оптических инструментов. Основной метод стерилизации оптических инструментов, требующих щадящей обработки с исключением нагревания, - газовая стерилизация. Этим способом обрабатывают все инструменты для проведения лапароскопических и торакоскопических вмешательств, что связано со сложным их устройством. При стерилизации фиброгастроскопов, холедохоскопов, колоноскопов возможно применение и холодной стерилизации с использованием химических антисептиков. Следует особо отметить, что наилучшим способом профилактики контактной инфекции признано использование одноразового инструментария, подвергшегося лучевой заводской стерилизации! Стерилизация перевязочного материала и белья Перевязочный материал и бельё стерилизуют автоклавированием при стандартных режимах. Перед стерилизацией перевязочный материал и бельё укладывают в биксы. Существует три основных вида укладки бикса: универсальная, целенаправленная и видовая укладки. Универсальная укладка. Обычно используют при работе в перевязочной и при малых операциях. Бикс условно разделяют на секторы, каждый из них заполняют определённым видом перевязочного материала или белья: в один сектор помещают салфетки, в другой – шарики, в третий – тампоны и т. д. Целенаправленная укладка. Предназначена для выполнения определнных манипуляций, процедур и малых операций. Например, укладка для трахеостомии, катетеризации подключичной вены, перидуральной анестезии и пр. В бикс укладывают все инструменты, перевязочный материал и бельё, необходимые для осуществления процедур. Видовая укладка. Обычно используют в операционных, где необходимо большое количество стерильного материала. При этом в один бикс, например, укладывают хирургические халаты, в другой – простыни, в третий – салфетки и т. д. В небольшом количестве используют перевязочный материал в упаковках, прошедших лучевую стерилизацию. Существуют и специальные наборы операционного белья одноразового использования (халаты и простыни), изготовленные из синтетических тканей, также подвергшихся лучевой стерилизации. 11... [стр. 11 ⇒]

- Руки хирурга. Общие принципы и способы стерилизации. Стерилизация – полное освобождение какого-либо предмета от микроорганизмов и их спор путём воздействия на него физическими или химическими факторами. Стерилизация – основа асептики. Методы и средства стерилизации должны обеспечивать гибель всех, в том числе высокоустойчивых, микроорганизмов (как патогенных, так и непатогенных). Наиболее устойчивы споры микроорганизмов. Поэтому возможность применения для стерилизации определённых средств оценивают наличием у них спороцидной активности, проявляемой в приемлемые сроки. Используемые в практике методы и средства должны обладать следующими свойствами: 1 уничтожать микроорганизмы и их споры; 2 быть безопасными для больных и медперсонала; 3 не ухудшать рабочие свойства изделий. В современной асептике используют физические и химические методы стерилизации. Выбор того или иного способа стерилизации зависит, прежде всего, от свойств изделия. Основными считают физические методы стерилизации. Физические методы стерилизации. К физическим методам относят термические способы – стерилизацию паром под давлением (автоклавирование), стерилизацию горячим воздухом (сухим жаром), а также лучевую стерилизацию. Стерилизация паром под давлением (автоклавирование). При этом способе стерилизации действующим агентом служит горячий пар. Стерилизацию просто текучим паром в настоящее время не используют, так как температура пара в обычных условиях (100%С) не достаточна для уничтожения всех микробов. В автоклаве (аппарат для стерилизации паром под давлением) возможно нагревание воды при повышенном давлении. Это повышает точку кипения воды и соответственно температуру пара до 132,2 С (при давлении 2 атм). Хирургические инструменты, перевязочный материал, бельё и другие материалы загружают в автоклав в специальных металлических коробках – биксах Шиммельбуша. Биксы имеют боковые отверстия, которые перед стерилизацией открывают. Крышку бикса плотно закрывают. После загрузки биксов автоклав закрывают герметичной крышкой и проводят необходимые манипуляции для начала его работы в определённом режиме. Работу автоклава контролируют при помощи показателей манометра и термометра. Существуют три режима стерилизации: При давлении 1,1 атм (t = 119,6 o C) – 45 мин При давлении 2 атм (t =132,9 о С) – 20 мин По окончании стерилизации биксы некоторое время остаются в горячем автоклаве для просушки при немного приоткрытой дверце. При извлечении биксов из автоклава закрывают отверстия в стенках биксов и отмечают дату стерилизации (обычно на прикреплённый к биксу кусочек клеёнки). Закрытый бикс сохраняет стерильность находящихся в нём предметов в течение 72 ч. Стерилизация горячим воздухом (сухим жаром). 24... [стр. 24 ⇒]

Высушивание можно осуществить естественным путём. В последнее время, особенно при последующей стерилизации горячим воздухом, инструменты сушат в сухожаровом шкафу при температуре 80° C в течение 30 мин. После высушивания инструменты готовы к стерилизации. Собственно стерилизация. Выбор метода стерилизации в первую очередь зависит от вида хирургических инструментов. Все хирургические инструменты можно условно разделить на три группы: Металлические (режущие: скальпель, ножницы, хирургические иглы и пр., нережущие: шприцы, иглы, зажимы, пинцеты, крючки и пр.) резиновые и пластмассовые (катетеры, зонды, дренажи, наконечники для клизм и пр.) оптические (лапароскоп, гастроскоп, холедохоскоп, цистоскоп и пр.). основной метод стерилизации нережущих металлических инструментов – стерилизация горячим воздухом в сухожаровом шкафу или автоклаве при стандартных режимах. Некоторые виды простых инструментов (пинцеты, зажимы и др.), предназначенные для одноразового использования, можно стерилизовать лучевым способом. Стерилизация режущих металлических инструментов. Проведение стерилизации режущих инструментов с помощью термических методов приводит к их затуплению и потере необходимых свойств. Основной метод стерилизации режущих инструментов – холодный химический способ с применением растворов антисептиков. Самыми лучшими способами стерилизации считают газовую стерилизацию (в озоново-воздушной камере) и лучевую стерилизацию в заводских условиях. Последний метод получил распространение при использовании одноразовых лезвий для скальпеля и хирургических игл (атравматический шовный материал). Стерилизация резиновых и пластмассовых инструментов. Основной метод стерилизации резиновых изделий – автоклавирование. При многократной стерилизации резина теряет свои эластические свойства, трескается, что признано некоторым недостатком метода. Пластмассовые изделия разового использования, а также катетеры и зонды подвергают лучевой заводской стерилизации. Особо следует сказать о стерилизации перчаток. В последнее время наиболее часто используют одноразовые перчатки, подвергшиеся лучевой заводской стерилизации. При многократном использовании основным методом стерилизации становится автоклавирование в щадящем режиме: после предстерилизационной обработки перчатки высушивают, пересыпают тальком (предупреждает слипание), заворачивают в марлю, укладывают в бикс. Автоклавируют при 1,1 атм. в течение 30 – 40 мин, при 1,5 атм. – 15 – 20 мин. После надевания стерильных перчаток обычно их обрабатывают марлевым шариком со спиртом для снятия с поверхности талька 27... [стр. 27 ⇒]

Деконтаминация фильтра осуществляется: 1) в сухожаровом шкафу при температуре 160 °C в течение 4 ч; 2) автоклавированием на сетках при давлении 2 атм в течение 1,5 ч (гарантийный срок эксплуатации фильтра – 10 циклов автоклавирования). Должностные приказы Кроме приказов, выдержки из которых были приведены выше, фельдшер скорой медицинской помощи должен руководствоваться в своей работе должностными документами. 1. Приказ МЗ СССР от 10.06.1985 г. № 770 О введении в действие отраслевого стандарта ОСТ 42-21-2-85 «Стерилизация и дезинфекция изделий медицинского назначения. Методы, средства и режимы». 2. Приказ МЗ СССР от 12.07.1989 г. № 408 «О мерах по снижению заболеваемости вирусными гепатитами в стране». 3. Приказ МЗ РФ от 30.10.1995 г. № 295 «О введении в действие правил проведения обязательного медицинского освидетельствования на ВИЧ и перечня работников отдельных профессий, производств, предприятий, учреждений и организаций, которые проходят обязательное медицинское освидетельствование на ВИЧ». В этом документе перечислены группы лиц, подлежащие обязательному освидетельствованию на ВИЧ, правила проведения этого освидетельствования, а также перечень клинических проявлений, на основании которых у больного можно заподозрить СПИД. 4. Приказ МЗ РФ от 12.11.1997 г. № 330 «О мерах по улучшению учета, хранения, выписывания и использования наркотических средств и психотропных веществ». 5. Приказ МЗ РФ от 26.11.1998 г. № 348 «Об усилении мероприятий по профилактике эпидемического сыпного тифа и борьбе с педикулезом». 6. Приказ МЗ РФ от 23.12.1998 г. № 375 «О мерах по усилению эпидемиологического надзора и профилактики менингококковой инфекции и гнойных бактериальных менингитов». Некоторые другие приказы и инструкции, а также приказы и инструкции местных органов здравоохранения. Знание этих документов периодически проверяется на рабочих местах представителями соответствующих комиссий, а также руководителями лечебно-профилактических учреждений. Оснащение машин «скорой помощи» Оборудование В соответствии с требованиями Приказа МЗ РФ от 26.03.1999 г. № 100: 1) медицинский ящик-укладка основной; 2) дополнительный медицинский ящик для размещения родового пакета, реанимационного набора, инфузионных растворов; 3) электрокардиограф портативный; 4) дефибриллятор портативный с электрокардиоскопом; 5) аппарат ИВЛ типа «Пневмокомп» или (и) ДАР; 6) аппарат ингаляционного наркоза типа АН-9; 7) аппарат ИВЛ ручной портативный типа АДР-1200; 8) портативный глюкометр или глюкотесты; 9) тонометр и фонендоскоп;... [стр. 22 ⇒]

3. Мойка и дезинфекция клеток, кормушек, поилок и другого инвентаря производится работниками вивария в помещении (отделении) для мойки и дезинфекции оборудования и инвентаря с применением моющих и дезинфицирующих средств. Дезинфекция клеток производится после каждого их использования. 4.4. Мойка клеток, кормушек, поилок и другого инвентаря из помещений карантина и изолятора производится в помещении (отделении) для мойки и дезинфекции оборудования и инвентаря при условии предварительного их обеззараживания. 4.5. Методы и способы дезинфекции, дезинсекции и режим автоклавирования оборудования, инвентаря, помещений устанавливаются в каждом конкретном случае ветеринарным врачом с учетом специфики проводимых экспериментов на животных. Методы и способы дезинфекции, дезинсекции, режим автоклавирования и используемые дезинфекционные, дезинсекционные и моющие средства не должны оказывать вредного воздействия на здоровье работников вивария и животных, а также результаты экспериментов. 4.6. Уборка всех помещений вивария производится ежедневно с применением моющих и дезинфицирующих средств. За каждым помещением для содержания животных закрепляется уборочный инвентарь, который должен быть промаркирован и храниться в специально отведенном месте. 4.7. Помещения, в которых обнаружены животные с подозрением на инфекционные заболевания или больные животные, подвергаются заключительной дезинфекции в соответствии с указаниями ветеринарного врача. В случае возникновения массовых заболеваний среди животных или при обнаружении случаев инфекционных заболеваний, опасных для животных и человека, в виварии проводится необходимый комплекс противоэпидемических мероприятий по требованию ветеринарной службы. Решение о лечении или уничтожении животных, больных инфекционными заболеваниями, опасными для здоровья человека и/или животных, в каждом конкретном случае принимается ветеринарным врачом. [стр. 8 ⇒]

Корма Кормление лабораторных животных (мышей, крыс, хомяков и др.) всех категорий должно осуществляться полнорационным гранулированным комбикормом, изготовленным в соответствии со стандартом «Комбикорма полнорационные для лабораторных животных». Гранулированный комбикорм следует хранить в сухих, чистых, хорошо проветриваемых, не зараженных амбарными вредителями и дикими грызунами складских помещениях, не имеющих посторонних запахов. Оптимальные условия хранения при температуре +5°С и влажности 50– 60%. Показатели температуры и влажности в комнате регистрируются по показаниям термометра-гигрометра. Санитарная обработка комнаты проходит в соответствии с «Планом санитарных мероприятий в комнате хранения корма и подстила». В зону содержания животных корм поступает только после автоклавирования. Двух–трехдневный запас проавтоклавированного корма может храниться в клетках в закрывающемся металлическом шкафу в «чистой» комнате. Непосредственно в комнатах содержания животных корм не хранится. Помещения для приготовления кормов. Перед поступлением в зону содержания SPF-животных в комнате подготовки корма мешки с кормом вскрываются, корм засыпается в металлические поддоны и автоклавируется. Раздача корма. Корм заносится в комнату содержания животных в клетках или на поддонах в количестве, необходимом для кормления. Для грызунов корм раздается (досыпается) в кормушки клеток из раздаточной емкости в соответствии с суточными нормами кормления или в соответствии с установленной исследовательским протоколом нормой. Во время еженедельной смены клеток с аксессуарами остатки корма вывозятся и утилизируются. Из клетки в клетку корм не переносится. Корм, упавший на пол, в кормушки не возвращается, выносится из комнаты и утилизируется. Контроль качества корма. Периодически (один раз в 4 месяца) берутся пробы корма, находящегося в «чистой автоклавной» после автоклавирования на стерильность. Анализ осуществляется в лабораториях Департамента санитарно-эпидемиологического надзора Минздрава РФ. Заключение о проведении данного анализа должно храниться в архиве ЭБК не менее 5 лет. Контроль за наличием паразитов осуществляется специализированным государственным предприятием системы санитарно-эпидемиологической службы по договору на проведение дезинфекционных работ. Заключение о проведении данного контроля должно храниться в архиве ЭБК не менее 5 лет. [стр. 67 ⇒]

Очистка и дезинфекция помещений для животных В комплексе санитарно-гигиенических мероприятий, проводимых в питомниках и ЭБК, большая роль принадлежит дезинфекции, целью которой является уничтожение в окружающей среде возбудителей инфекционных заболеваний. Под стерилизацией понимают абсолютный процесс разрушения всех живых микроорганизмов. Проведение эффективной дезинфекции и стерилизации требует, прежде всего, тщательной очистки с целью удаления органических частиц и грязи с дезинфицируемых и стерилизуемых поверхностей. Фаза очистки включает механическое удаление частиц грязи с поверхностей при помощи щетки и последующее мытье с использованием мыла и детергентов. В лабораторном животноводстве применяют следующие способы дезинфекции и стерилизации: – дезинфекция путем протирания, при которой дезинфицируемый предмет с гладкой поверхностью протирается дезраствором. Методом протирания дезинфицируют поверхности стен, полов, дверей, стеллажей, окон, светильников, перфорированные воздухораспределители; – дезинфекция путем распыления, при которой дезраствор наносится на поверхность при помощи механических распылителей. Для этих целей используют ранцевые распылители. Дезинфекцию проводят в защитной маске и очках; – дезинфекция путем замачивания, при которой дезинфицируемые материалы помешаются в дезраствор и выдерживаются в нем в течение не менее четырех часов. С помощью этого метода дезинфицируются все предметы, не подлежащие автоклавированию и на которые дезраствор не оказывает разрушающего действия (клетки и инвентарь из полипропилена, резиновые пробки и др.). Метод замачивания используют при проведении за барьер через гидрошлюз предметов, не подлежащих стерилизации в автоклаве и газовой камере (емкости с дезрастворами и др.); – стерилизация путем газации (фумигация) используется для стерилизации помещений, а также предметов, не подлежащих влажной дезинфекции и автоклавированию (транспортные клетки, канцелярские принадлежности, обувь и др.). Для фумигации помещений используют газ формальдегид. Метод газации применяют при проведении предметов за барьер с использованием газовых камер (формалиновая, этиленоксидная); – стерилизация путем автоклавирования, при которой через проходной паровой автоклав высокого давления в «чистую» зону проводят... [стр. 68 ⇒]

). Ежедневно проводится влажная уборка полов в комнатах для содержания животных с использованием дезинфицирующего средства. Еженедельно проводится влажная уборка комнаты с мытьем стен, дверей, решеток воздуховодов с применением дезсредств. Ежеквартально или по окончании исследования проводится генеральная уборка комнаты (в отсутствии животных в комнате). Все поверхности комнаты обрабатываются дезсредством при помощи распылителей. Уборка коридоров в «чистой» зоне содержания животных производится с той же частотой и теми же методами, что и комнаты содержания животных. Ежедневно после окончания работ в чистой зоне в «грязном» и «чистом» коридорах и «чистой автоклавной» включается УФ. Комната хранения корма и подстила обрабатывается. Один раз в 1,5 месяца проводится генеральная обработка комнаты. Санитарную обработку пола в действующем санпропускнике проводят ежедневно в конце рабочего дня. Еженедельно проводят полную санитарную обработку пола, стен и поверхностей. Ежеквартально проводится генеральная уборка и смена санпропускников. Факт проведения данных мероприятий должен фиксироваться в лабораторном журнале, который должен храниться в архиве ЭБК не менее 3 лет после окончания исследования. Обработка инвентаря. Швабры, находящиеся в комнатах содержания животных и во вспомогательных помещениях, ежедневно обрабатываются тем же дезраствором, который используется для санитарии данной комнаты. Еженедельно производят санитарную обработку всей поверхности швабр протиранием дезраствором. Ежемесячно все швабры выносят из «чистой» зоны в моечно-стерилизационный блок и подвергают обработке полным погружением в дезраствор. Дезраствор для мытья полов и поверхностей в зоне содержания животных наливается в клетки, используемые специально только для мытья. После использования клетки для мытья полов через грязный коридор выносятся на мойку, где моются и стерилизуются автоклавированием. Плоские мопы и тканевые салфетки ежедневно выносят из «чистой» зоны через «грязный» коридор после завершения рутинной санитарной обработки помещений. Мопы и салфетки стирают и стерилизуют автоклавированием. Для уборки комнат содержания животных используются швабры с отжимом. В каждой комнате имеется своя швабра, которая не выносится в другие комнаты. В качестве емкости для мытья используются специально предназначенные для этого клетки, которые ежедневно вносятся в комнату из чистой автоклавной и выносятся из комнат через грязный... [стр. 69 ⇒]

Способ включает смешивание в воде янтарной кислоты с антисептиком стимулятором Дорогова второй фракции, новокаином, доведение рН до 6,9-7,0, стерилизацию автоклавированием в режиме 1,0-1,1 атм в течение 20 мин. В его состав препарата дополнительно вводят цианкобаламин и глюкозу при следующем соотношении компонентов, мас.%: АСД-Ф- 2 - 4,0, янтарная кислота - 1,0, цианкобаламин - 0,015, глюкоза - 4,0, новокаин - 0,25, дистиллированная вода - остальное. Способ позволяет получить препарат с комплексным иммуностимулирующим действием. 2 табл. ормула изобретения Способ получения комплексного иммуностимулирующего препарата для повышения резистентности организма животных, включающий смешивание в воде янтарной кислоты с антисептиком стимулятором Дорогова второй фракции, новокаином, доведение рН до 6,9-7,0, стерилизацию автоклавированием в режиме 1,0-1,1 атм в течение 20 мин, отличающийся тем, что в его состав дополнительно вводят цианкобаламин и глюкозу при следующем соотношении компонентов, мас.%:... [стр. 309 ⇒]

Гиповитаминоз РР (пеллагра) наблюдается у свиней и птицы, характеризуется поражениями кожи, нервными симптомами, задержкой в росте и расстройствами пищеварения. Специфическим признаком авитаминоза В5 у собак является потемнение языка - «черный язык». У птицы при авитаминозе бывают чешуйчатые дерматиты ног, нарушение оперения, поносы, снижение яйценоскости и выводимости цыплят. Развитие пеллагры связано с блокированием биоэнергетических процессов, что приводит к нарушению обмена веществ в тканях. Обмен амида никотиновой кислоты тесно связан с белковым метаболизмом. Усвояемость витамина В5 повышается у поросят при обеспечении их рациона полноценным бел№м. Дрожжи и дрожжеванные корма не только обогащают рационы белком и никотиновой кислотой, но стимулируют ее образование из триптофана. При содержании большого количества жира в рационе и накоплении в тканях кетоновых тел (ацетоуксусной и 0-оксимасляной кислот) биосинтез никотиновой кислоты из триптофана в тканях подавляется. Витамин В6 (адермин, пиридоксин). В 1926 г. Гольбергер впервые наблюдал у крыс, содержавшихся на синтетической диете, пеллагроподобные поражения кожи, которые исчезали при включении в рацион автоклавированных дрожжей. С открытием витамина В2 эти явления стали приписывать недостатку рибофлавина. В 1935 г. рибофлавин был синтезирован в кристаллическом виде. У крыс после содержания на гольбергеровской диете вызвали дерматит. Лечение рибофлавином не дало положительных результатов. Однако применение автоклавированных дрожжей вылечивало подопытных животных. В 1938 г. выделен и синтезирован чистый витамин В6, названный адермином, по химическому строению - пиридоксин (пиридоксол). В 1944 г. была установлена структура и доказано строение форм пиридоксола, пиридоксаля и пиридоксамина. Химическая природа витамина В6 и его свойства. Витамин В6 является производным 3-оксипиридина. Одна из форм вита32... [стр. 18 ⇒]

Смотреть страницы где упоминается термин "автоклавирование": [15] [7] [528] [67] [32] [3] [25] [632] [214] [13] [83] [10] [527] [67] [8] [40] [43] [172] [10] [107] [118] [5] [24] [70] [39] [33] [33] [198] [18] [138] [85] [25] [112] [113] [114] [1] [1] [1] [1] [1] [1] [1] [1] [1] [1] [1] [1] [1] [1] [1]